Лабораторные мыши и крысы
Mary Johnson (mary at labome dot com)
Synatom Research, Princeton, New Jersey, United States
Перевод
Константин Якимчук (Konstantin dot Yakimchuk at ki dot se)
Каролинский институт, Швеция
DOI
http://dx.doi.org/10.13070/mm.ru.2.113
Дата
последнего обновления : 2015-03-09; оригинальная версия : 2012-10-05
Цитировать как
MATER METHODS ru 2012;2:113
English Abstract

A summary and overview about the mice and rats used in biomedical research, based on a survey of 303 publications.

  • C57BL/6 and BALB/c are the main mouse strains.
  • Sprague-Dawley and Wistar are the main rat strains.
  • The Jackson Laboratory, Charles River Laboratories, Taconic Farms, and Harlan Laboratories are the main suppliers.
  • Major research applications are in immunology, oncology, physiology, pathology, and neuroscience.
  • Specific strains or ES cell lines can be searched at IMSR database.

Резюме
  • C57BL / 6 и BALB / с являются основными линиями мышей.
  • Sprague-Dawley и Wistar являются основными линиями крыс.
  • Jackson Laboratory, Charles River Laboratories, Taconic Farms, и Harlan лаборатории являются основными поставщиками.
  • Основные научные приложения - в области иммунологии, онкологии, физиологии, патологии и нейронауки.
  • Специальные линии или клеточные линии ES могут быть найдены в базе данных IMSR.
Вступление

Животные модели являются незаменимыми инструментами в области биомедицинских исследований. Они были использованы с первых дней научных исследований и до сих пор в значительной степени способствуют нашему пониманию функций отдельных генов, механизмов различных заболеваний, а также эффективности и токсичности различных лекарственных препаратов и химических веществ. Геномы многих организмов использующихся в качестве моделей были секвенированы, и было обнаружено что многие гены остаются неизменны у модельных организмов и человека.Labome провела обзор животных моделей описанных в 303 рецензируемых официальных публикациях (табл. 1).

животныелиниякол-вопоставщиккол-во
мышиC57BL/6133
The Jackson Laboratory78
Charles River21
Taconic Farms12
Harlan Laboratories10
мышиBALB/C31
The Jackson Laboratory10
Charles River9
Taconic Farms5
Harlan Laboratories3
мышиCD-19
мышиSCID8
мышиA/J4
крысыSprague-Dawley10
крысыWistar7
Таблица 1. Количество публикаций (число) для основных линий мышей и крыс. Каждая линия включает сублинии, гибридные линии и основные линии. Также указаны цифры публикаций со ссылкой на крупных поставщиков. В связи со сложностью названий линий/коллекций животных, используемых в публикациях, число для каждой линии минимальное.

Для приложений антител Labome проанализировалa около 10,000 публикаций находящихся в открытом доступе. Кроме того, были включены 70 публикаций в журнале Science. Почти все статьи были опубликованы с 2008 по 2011.

Результаты показывают, что мыши являются предпочтительными лабораторными животными; наиболее широко используются линии мышей и крыс линии мышей C57BL/6 и BALB/с, линии крыс Sprague-Dawley и Wistar. Другие линии мышей, такие как A/J, CD1 и ICR, также были использованы. Большинство этих животных поставляются четырьмя основными поставщиками, The Jackson Laboratory, Charles River Laboratories, Taconic и Harlan Laboratories. Вышеупомянутые животные модели используются для исследований в области иммунологии, онкологии, физиологии, патологии и всё чаще, неврологии.

Альбинизм лабораторных грызунов: большинство лабораторных грызунов альбиносы, из-за общей мутации в гене тирозиназы у всех альбиносных линий лабораторных крыс [1] и, по меньшей мере, некоторые из линий мышей - альбиносы [2]. Тирозиназа является ферментом, ограничивающим скорость производства пигмента меланина. Распространенность альбинизма среди лабораторных грызунов обясняется тем, что многие из самых ранних установленных линий были альбиносами, а также альбинизм является простым селективным маркером на ранних стадиях.

Мыши

Мыши является наиболее цитируемыми животными моделями. Среди 303 статей, 276 приводят различные линии мышей (наряду с 21 ссылкой на крыс, и один или два для кроликов, хорьков, морских свинок, и резус-макак). Не удивительно, что 99% мышиных генов мыши имеют человеческие аналоги.

Мышь и ее близкий родственник, крыса, являются относительно недорогими для размножения и культивирования. Они могут размножаться быстро, таким образом, позволяя исследователям изучать функцию определенных генов через несколько поколений потомков в течение разумного периода времени. Их физиология и генетика хорошо изучены, и их легко можно сравнить с человеком. Технологии, такие как трансгенные методы, были разработаны в течение многих десятилетий для изучения генетики и функции специфических генов. Мышиные модели многих заболеваний человека были также разработаны для исследования патогенеза заболеваний, а также для оценки эффективности и токсичности различных лекарственных препаратов.

линияосновные характеристикипреимуществаосновные приложения
C57BL/6инбредные, чёрныестабильность линии, легкость разведенияфизиологические или патологические модели для in vivo экспериментов, основная линия для трансгенных и конгенных животных.
BALB/cинбредные, альбиносы, иммунодефицитные легкость разведения, подвержены развитию опухолейгибридома и производство моноклональных антител, исследовательские модели для терапии рака и иммунологических исследований
CD-1 аутбредные, альбиносыгенетическая изменчивостьпозиционное клонирование, генотипический оттбор, токсикологическое тестирование (под вопросом)
CB17 SCIDинбредные, альбиносынет Т и В-клеток, трансплантации опухолейиммунодефицитные животные модели для тестирования новых методов лечения рака и в качестве хозяев для тканей иммунной системы человека.
Таблица 2. Основные линии мышей и их особенности и применение.

Широко используются инбредные линии, конгенные и трансгенные мыши с инбредной основой. Инбредные линии определяются как линии, которые прошли через близкородственное спаривание (или его эквивалент) в течение 20 поколений, таким образом животные из той же инбредной линии рассматриваются как генетически идентичные. Получение конгенных линий достигается за счет повторных скрещиваний с инбредной линией для выбора уникального маркера в течение как минимум 10 поколений. Наиболее цитируемые линии C57BL/6, BALB/с, CD-1, SCID и A/J. Только CD-1 не являются близкородственными линиями.

Mыши C57BL/6

C57BL/6, которые также называются "C57 черные 6" или просто "черные 6", имеют преимущества стабильности и легкости разведения. Это также первая мышиная линия, чей геном был полностью секвенирован в 2005 году, на втором месте после генома человека. Международный консорциум по фенотипированию мышей (МКФМ) [3], инициированный 29 сентября 2011 года, направлен на каталогизацию каждого мышиного гена с помощью нокаут технологий. C57BL/6 мыши используются в трёх основных областях. Наиболее распространенным является использование в качестве физиологических или патологических моделей для экспериментов in vivo. Во-вторых, они часто применяются для создания трансгенных моделей мышей. Наконец, C57BL/6, используются в качестве основной линии для генерации конгенных спонтанных и индуцированных мутаций.

Лабораторные мыши и крысы Рисунок 1
Рисунок 1. Cамка C57BL/6, возраст - 22 месяцев.

Среди статей, проанализированных Labome, в значительном проценте (по крайней мере 133 публикациях) использовались C57BL/6 мыши. Считается, что линия C57BL/6 по-прежнему будет предпочтительной линией, в связи с тем, что ее геном был секвенирован, и совместными усилиями функционального анализа генов по IMPC. Хотя преимущества использования "стандартных" штаммов в исследованиях очевидны, интересные вопросы были подняты в связи с недостатками такой практики [4].

C57BL/6 из Jackson Laboratory

Дикий тип, конгенные, и трансгенные/нокаутные мыши C57BL/6 от Jackson Laboratory были использованы для изучения развития Т-клеток [5, 6], исследования B лимфоцитов [7], воспаления [8-12], регулирования PepT1 бутиратом [13], защитной роли анти-Stx2 антител [14], эффекта циркадианных изменений состояния окислительно-восстановительной возбудимости SCN нейронов [15], влияния ресвератрола на митохондриальный биогенез в мышцах [16], механизмы миграции эндосомных Toll-подобных рецепторов [17], эффектов воздействия микробов на NKT клетки [18], участия фактора роста TGF-b3 в нёбной адгезии [19], фиброза и кардиомиопатии [20], сердечной недостаточности [21], легочной эмболии [22], колита [7], гамма активации PI3K [23], функций тромбоцитов [24], заболевания типа трансплантат против хозяина [25, 26], в начале пневмонии [27], диабета [28, 29], кардиопротективного эффекта кининового В1 рецептора [30], микробиот кожи в качестве защитного иммунитета [31], IL-17 и IL-22 [32], эффектов курения [33], хронической невропатической боли [34], адаптивного иммунитета [35], варикозов [36], и дисфункции микрососудов эндотельного барьера [37]. Инфекционные заболевания и защита от патогенов являются центральными темами многих публикаций, описывающих использование мышей C57BL/6: синантропных бактерий [38], церебральной патологии малярии [39], легионелл [40], Citrobacter rodentium [41], малярии [42], инфекции Salmonella enterica серотипа Typhimurium [43], инвазивных инфекций Salmonella typhimurium [44]. Narita M и др. использовали C57Bl/6J для изучения синтеза секреторных белков [45]. B6.129(Cg)-Tg(CAG-Bgeo/GFP)21Lbe/J мыши [46] и B6.129X1-Gt(ROSA)26Sortm1(EYFP)Cos/J мыши [46] были также использованы.

Мыши C57BL/6 от Charles River Laboratories

Charles River Laboratories является еще одним крупным поставщиком мышей C57BL/6. Charles River C57BL/6 мыши были использованы для изучения грызунов в моделях малярийного паразита Plasmodium berghei [47], фетуин-А [48], эндокринной дифференциации островковых клеток [49], холестатической болезни печени [50], транспортеров ксенобиотиков [51], презентации антигенов [52], рекомбинации в гомеостазе В-лимфоцитов [53], функции Bmi1 [54], восприимчивости к SD и неврологическому дефициту [55], PFK1 гликозилирования в росте клеток рака [56], меток метилирования в экспрессии генов в зародышевой линии [57], генитальной HSV-2 инфекции [58], и экспрессии гена ATM [59]. Совсем недавно, Li XY и соавт. использовали взрослых самцов мышей C57BL/6, чтобы исследовать роль PKM-zeta на гиперчувствительность к нейропатической боли в коре [60] и Oh JS и др. проанализировали ооцитов из мышей C57BL/6 [61].

Мыши C57BL/6 от Taconic Farms

Мыши C57BL/6 от Taconic были использованы для изучения острого и хронического ответа на психомоторный стимулятор [62], роли DPP-IV в иммунной системе [63], роли ENT3 в функции лизосом и гомеостазе макрофагов [64], вовлечения рапамицина через нарушения в mTORC2 в процессе резистентности к инсулину [65], эффекта острого желудочно-кишечной инфекции на иммунный ответ на комменсалы [66], активности микрофлоры кожи в качестве защитного иммунитета [31], лимфопролиферативных заболеваний у мышей [67], цитолитических эффекторных Т-лимфоцитов [68], функций тучных клеток [69], и развития и происхождения NKT лимфоцитов [70]. Round JL и соавт. использовали C57BL/6 отTaconic Farms, чтобы исследовать роль Bacteroides fragilis в установлении симбиоза организма хозяина и микроба [71]. B6.129S1-TLR3 tm1Flv/J (TLR3 -/-) и B6.129S7-RAG1 tm1Mom (RAG-/-) мыши от Taconic Farms были использованы для изучения microbiota2 кожи [72] и B6.SJL-Ptprca (CD45.1) мыши использовались для изучения паразитарной инфекции [66].

Мыши C57BL/6 от Harlan Laboratories

Мыши C57BL/6 от Harlan Laboratories были использованы для изучения реперфузии при ишемии [73], вакцинации от Mycobacterium tuberculosis [74], экспрессии нейротрофина [75], IL-1 [76], катаральной вирусной инфекции [77], механизма регулирования Т-клеточной дифференцировки [78], стойких вирусных инфекций и хронических воспалительных заболеваний [79].

C57BL / 6 от других поставщиков

Другие поставщики предоставляют мышей C57BL/6, которые были использованы для изучения ECE-1 [80], эффекта CSE1L/CAS на раковые клетки [81], и эффекта дельфилин абляции на долгосрочную индукцию депрессии и оптокинетического адаптивного ответа [82], метаболизма глюкозы и липидов [83]. Мыши C57BL/6 с экспериментальным аутоиммунным увеоретинитом от Sankyo Laboratory Service Corp были использованы для изучения распространения аутоантигенов различных белков сетчатки [84] и исследования роли эстеразы D и мозговой креатинкиназы как аутоантигенов сетчатки [85] в эндогенном увеите.

Академические или национальные виварии также являются поставщиками экспериментальных животных. Fogg DK и др. использовали мышей, экспрессирующих EGFP в локусе гена CX3CR1 (Cx3cr1gfp/+) на CD45.2 C57BL/6 основе из вивария Университета Рене Декарта для определения клонального предшественника клеток костного мозга [86]. Сопоставимые по возрасту и полу мыши C57BL/6 из Национального Института Рака использовались в качестве контроля дикого типа [87]. C57BL/6.Myd88-/- мыши из Университета Алабамы в Бирмингеме были использованы для изучения роли транс-ретиноевой кислоты в развитии регуляторых Т-клеток [11]. Yi ZF и др. выполнили микроанализ роговицы и гистологическое исследование C57BL/6 мышей из Национальной Лаборатории Грызунов Ресурсов Животных в целях выявления нового пептида из человеческого аполипопротеина и изучения его роли в ангиогенезе и опухолевом росте [88].

Mыши BALB/с

BALB/с представляет собой альбиносную, иммунодефицитную инбредную линию. BALB/с мыши характеризуются легкостью разведения и минимальными вариациями веса между самками и самцами. Весьма примечательно то, что случаи образования опухолей молочных желёз у BALB/с мышей редки, но они очень чувствительны к канцерогенам, и опухоли легких, ретикулярные новообразования, опухоли почек, и другие часто встречаются у BALB/с. Кроме того, инъекции минерального масла могут легко вызывать плазмацитомы у BALB/C, также эта линия широко используется для гибридом и производства моноклональных антител. BALB/с мыши полезны для исследований в области терапии рака и иммунологии.

Лабораторные мыши и крысы Рисунок 2
Рисунок 2. BALB/с мыши. Предоставлено Jackson Laboratory.

Labome выяснила что, в 31 публикаций используются линии BALB/C для развития гибридом, моноклональных антител, исследований в области инфекционных заболеваний. BALB/с мыши используются как живая модель для общих исследований.

Например, Oakley MS и соавт. выявили изменения мозга при церебральной малярии у BALB/с мышей дикого типа от Jackson Laboratory [39]. Takeda K и др. использовали BALB/с мышей и (В6 х BALB/с) F1 мышей от Charles River, Япония, чтобы изучитьь роль апоптоза связанного с death receptor 5 в холестазе печени [50], Oliveira Gde A др. используя BALB/с мышей из Charles River Laboratories показали, что антиплазмодийный иммунитет у комаров зависит от системы эпителиального нитрования peroxidase/NOX5 [89], Jagger BW и соавт. использовали JAX мышей и самок BALB/с мышей для инфекции мышей для того, чтобы показать, что ответ хозяина на вирус гриппа А модулировался новым белком PA-X [90], и Ekiert DC и др. изучали эффективность антител CR8020 против группы 2 вирусов гриппа у BALB/с мышей из Charles River Laboratories [91]. Li Y и др. использовали самок BALB/с мышей (Charles River Laboratories) чтобы исследовать функцию sopB [92]. Capraro GA и соавт. исследовали влияние генных мутаций SV5-P/V на рост вируса и адаптивного иммунного ответа у BALB/с мышей (Онкологический научно-исследовательский центр Фредрик) [93]. Kendirgi F и соавт. изучили прототипные линейные ДНК вакцины от вируса гриппа типа A/H5N1 у BALB/с мышей (Harlan) [94]. Charles River BALB/с мыши от Charles River использовались для заражения паразитарной инфекцией для изучения антиплазмодийного иммунитета у комаров [89].

Одним из наиболее распространенных применений линии BALB/C, как и в случае C57BL/6, является использование в качестве фоновой линии для различных нокаутных исследований или исследований дефицита генов. Nurieva RI и др. изучили роль IL-21, TH1, TH2 или TH17 линий в генерации фолликулярных хелперных Т-клеток используя Stat6-дефицитных и STAT4-дефицитных мышей BALB/с мышей от Jackson Laboratory [5]. Tawara I и соавт. исследовали роль секреции Th2 цитокинов в острой реакции трансплантат против хозяина у самок STAT6-дефицитных мышей BALB/с (H-2d) мышей (Jackson Laboratory) [25]. Ramaprakash Н и др. исследовали противогрибковые иммунные ответы на конидии Aspergillus fumigatus в BALB/с (TLR9+/+) мышей [95] и Castilow Е.М. и др. использовали IFN-gamma C.129S7 Ifngtm1Ts/J-дефицитных BALB/C мышей и мышей BALB /cAnNCr для изучения эффектов гамма-интерферона в течение вторичной инфекции RSV [96]. Chung YW и др. использовали самок BALB/CJ и BALB/с конгенных C.C3 TLR-4lps-/lps- мышей и мышей дикого типа BALB/с (Jackson Laboratory) для изучения влияния пробиотиков на развитие экспериментального колита с использованием Toll- подобный рецептор 4(TLR-4)-мутантных (lps-/lps-) мышей [97].

BALB/с мыши играют важную роль в онкологических исследованиях. Arscott WT и др. изучали подавление роста нейробластомы выполненной дипептидилпептидазой IV у BALB/c (nu/nu) nude мышей [98], Yi W и соавт. выполнили подкожные ксенотрансплантаты используя Charles River Laboratories атимических nude (Nu/Nu) мышей, чтобы показать, что FGFR-TACC слияние происходит у пациентов с GBM [99] и изучали роль PFK1 гликозилирования в росте раковых клеток с помощью nude (Nu/Nu) мышей от Charles River Laboratories [56], Кесслер JD и др. показали, что сумоиляция необходима для Мус-зависимых опухолей, используя ксенотрансплантаты клеток линии рака молочной железы на самках бестимусных nude Foxn1-Nu мышей от Харлан Labs [100], и Бове DM и соавт. применили бестимусным BALB/C nude (Nu/Nu) мышей (от Taconic) для анализа ангиогенеза роговицы [101].

Mыши CD-1

Хотя оба C57BL/6 и BALB/с мыши являются инбредными линиями для установления генетической однородности, CD-1 мыши являются наиболее часто используемыми исследовательскими объектами как аутбредными линиями (инбредные мыши кассифицируются как близкородственные линии).

Генетическая изменчивость аутбредных моделей исследования животных, может иметь преимущества в качестве в позиционном клонировании локусов количественных признаков и фенотипического или генотипического отбора специальной признака. Тем не менее, использование CD-1 мышей (и аутбредных моделей в целом) в научно-исследовательских областях, таких как токсикологии (безопасность и эффективность тестирования), биологии старения и онкологии были подвегнуты критике и не может быть полезным [102]. CD-1 мыши, как и BALB/с линии, являются альбиносами.

Несколько публикаций с использованием CD-1 мышей, в основном из Charles River Laboratories, включены в публикации проанализированные Labome. Ray S и др. использовали взрослых самок CD-1 мышей, чтобы продемонстрировать, что интеграция beta-catenin/Lef-1/Tcf-3 сигнала с ERalpha необходима для эндогенной регуляции эстроген-зависимых генов в биологии матки [103]. Tang N и др. исследовали морфогенез легочных трубок у CD-1 мышей [104]. Schulz C и др. изучали специфику развития миелоидных клеток у CD-1 мышей от Charles River [105], Ye Н и др. оценили устройство синтетической оптогенетической транскрипции [106]. Мыши CD-1 послужили источником для эмбрионов мыши [49], использованных для изучения CSTF-64 вариантов сплайсинга [107], а также исследования органогенеза позвоночных [108]. Ko HS использовал CD-1 мышей от Jackson Laboratory для исследования деградации LRRK2 [109].

Mыши СВ17 SCID

СВ17 SCID мыши (SCID относится к тяжелым комбинированным иммунодефицитам) является альбиносным штамм со спонтанной SCID мутацией. Мутация предотвращает развитие и созревание как Т- так и В-клеток. Однако мыши SCID имеют нормальные NK клетки, макрофаги и гранулоциты. Эти мыши выглядят также, как нормальные мыши. В связи с SCID мутацией, степень успеха трансплантации человеческих опухолевых клеток очень высока (даже выше, чем у голых мышей), что делает их ценной иммунодефицитной биологической моделью для тестирования новых методов лечения рака и в качестве экспериментальных хозяев для тканей иммунной системой человека.

Лабораторные мыши и крысы Рисунок 3
Рисунок 3. SCID мыши. Предоставлено доктором Патрисией Браун, NCI, NIH.

Li ZG и др. собрали и имплантировали образцы тканей в СВ17 SCID мышей (Charles River Laboratories) для изучения роли андрогенного рецептора в лечении костных метастаз рака предстательной железы [110]. Takeda K и др. изучали роль рецептора death receptor 5 mediated-apoptosis в холестатическом заболевания печени у мышей СВ17 SCID (Charles River Japan) [50]. Dubrovska A и др. использовали NOD СВ17-Prkdc (SCID) мышей (Jackson Laboratory) для изучения роли передачи сигналов PTEN/Akt/PI3K в поддержании и жизнеспособности раковых стволовых клеток, таких как клеточные популяции простаты [111] и Miyagawa Y и др. выполнили подкожные анализы туморогенеза у СВ17-SCID мышей (Clea Япония) для изучения экспрессии Dickkopf группы в опухолевых клетках группы Ewing [112]. Gonzalez ME и соавт. проверили гипотезу о том, что дерегулирование EZH2 способствует ER негативной прогрессии рака молочной железы у SCID мышей [113].

Mыши А/J

А/J мыши являются еще одной распространенной альбинос-моделью, с уникальными характеристиками, такими как позднее начало прогрессирующей мышечной дистрофии и индуцированной гормоном коры надпочечников врожденной волчьей пастью. Кроме того, они имеет высокую частоту самопроизвольной аденомы легких, и эта опухоль может легко развиваться в ответ на канцерогены.

Labome проанализировал 4 публикаций с использованием A/J мышей в качестве животных моделей. Takeda K и др. использовали А/J мышей (Япония SLC) для изучения роли рецептора death receptor 5 mediated-apoptosis в холестатическом заболевания печени [50]. А/J мыши от Jackson Laboratory были использованы Losick WP и соавт. для исследования роли полудоминантного Naip5 аллеля в иммунитете [40], Sanders CJ и соавт. для демонстрации роли флагеллина в адаптивном иммунитете [35], и Neunuebel MR и др. для исследования SidD модуляции Rab1 деампиляции при инфекции L. pneumophila [114].

Другие штаммы мышей и генетически-модифицированные мыши

Другие линии мышей, такие как мыши ICR [115], мыши 129X1/Sv [116], Т-клетки-дефицитные голые мышей [117], мыши F344/DuCrl2Swe [118], OF1 мыши [106], атимические nu (Nu/Nu) мыши [99], C57BL/10 мыши [119], FVB мыши [119, 120], GF мыши на B6 фоне [18], Swiss Webster (SW) мыши [18], и бестимусные голые Foxn1-nu мыши [100], также были использованы.

Генетически определенные и генетически модифицированные мыши и крысы широко используются в исследованиях для изучения функции специфических генов, а также в качестве экспериментальных моделей для различных болезней человека. Тысячи таких штаммов доступны, с множеством изменениями генов, отбором штаммов, а также различных приложений.

Р2Х7 нокаут мыши от Jackson Laboratory были использованы для изучения роли Р2Х7 рецептора в регенерации эпителия роговицы [121], и лептин нокаут (OB/OB) мыши (Jackson Laboratory) были использованы для определения влияния о-GlcNAcylation на функции тромбоцитов [24]. Также широко используются мыши с другими генными изменениями, такие как Cg-Prkdcscid IL2rgtm1Wjl/SzJ (NOD/SCID-IL2R-/-) мыши [122], B10.BR (H2K) мыши [52], B6.129 (Cg)-TG(CAG-Bgeo/GFP) 21Lbe/J мыши [46], B6.129S1-TLR3 tm1Flv/J (TLR3-/-) мыши [31], B6.129S2 - Il6tm1Kopf/ J (IL-6-/-) мыши [31], B6.129S7-RAG1 tm1Mom ( RAG1-/-) мышей [31], B6.129X1-Gt(ROSA 26Sortm1 (EYFP) Cos/J мыши [46], B6.SJL- Ptprca (CD45 0,1) мыши [66], Bmal 1+/- мыши [15], ICAM1-/- мыши [7], IL- 1R1-/- мыши [31], OT-II TCR трансгенные мыши [66], Rag1-/- мыши [7], репортер мыши Rosa26LSL-YFP [105], мыши Ubiquitin C-CreERT2 [65], IL-6-/- мыши [79], db/db и db/m мыши [123], TLR2-/- мыши [35], R6/2 Huntington мыши [124], и ОТ-2 TCR трансгенные, В6 Ly5.2 и 129/SvEv IFNAR1-дефицитные мыши [125].

Лабораторные мыши и крысы Рисунок 4
Рисунок 4. Lepr(db-3J) и нормальная мышь. Lepr(db-3J) мыши характеризуются "ожирением, булимией, нетерпимостью к холоду, резистентностью к инсулину, и бесплодием". Предоставлено Jackson Laboratory.
Крысы

Другой грызун, крыса, является второй наиболее цитируемой животной моделью. По сравнению с мышами, крысы крупнее, более ожесточенны, и более устойчивы к различным заболеваниям. Sprague-Dawley крысы и Wistar крысы - две наиболее часто используемые линии крыс. Как и в общих линиях мышей, эти две линии крыс являются альбиносами. С другой стороны, обе линии крыс являются аутбредными (наиболее часто используемые линии мышей являются инбредными). Лабораторные крысы относятся к виду Rattus norvegicus, в то время как лабораторные мыши относятся к нескольким различным видам.

Лабораторные мыши и крысы Рисунок 5
Рисунок 5. Крысы Sprague-Dawley. Предоставлено Harlan Laboratories.
Крысы Sprague-Dawley

Крысы Sprague-Dawley представляют собой гибридную альбиносную линию с длинными узкими головами. Они имеет высокую скорость размножения и низкий уровень заболеваемости спонтанными опухолями. Еë спокойствие темперамент и удобство в обращении привлекают ученых и лаборантов. Labome проанализировал 8 публикаций с использованием Sprague-Dawley как животных моделей, большинство из них были получены из Charles River .

В нейробиологических исследованиях, Ewert TJ и др. изучали влияние пост- инфарктной сердечной симпатической гиперактивности на экспрессию галанина у взрослых Sprague-Dawley крыс [126], Surgucheva I соавт. приготовили крыс клетки сетчатки Sprague-Dawley крыс для оценки гамма-синуклеина как маркера сетчатки ганглиозных клеток [127], Zhou HL и соавт. исследовали экспрессию нейротрофического фактора глиальной клеточной линии в ростральных и хвостовом отделах пересечëнного спинного мозга взрослых Sprague-Dawley крыс [128], и Schafe GE и др. исследовали долгосрочную потенциацию у взрослых мужчин необученных Sprague-Dawley крыс в естественных условиях [129], Dinieri JA и др. провели вирусных исследования по переносу вирусных генов у самцов крыс Sprague-Dawley для исследования изменëнной чувствительности полезных и препаратов у мышей с индуцированным нарушением функции CREB в прилежащем ядре [130], и Chen J и соавт. имплантировали самцов крыс Sprague-Dawley с односторонним постоянним дорсомедиальным гипоталамусным канюлированием для изучения роли DMH CCK в процессе потребления пищи [131].

Sprague-Dawley крысы были использованы еще в одной области патологических расследований. Reungjui S и др. подвергли самцов Sprague-Dawley крыс различным K+ диетам для исследования, включает ли гипокалемическая нефропатия нарушения почечного ангиогенеза [132]. Buchholz K и др. инфицировали крыс Sprague-Dawley Plasmodium berghei для изучения клеточной роли Plrx в его жизненном цикле [47]. Ben-Ami Bartal I и соавт. использовали крыс Sprague-Dawley от Charles River для проведения экспериментов по изучению поведения и обнаружили, что у крыс есть сочувствие и про-социальное поведение [133].

Крысы Wistar

Крысы Wistar являются еще одной гибридной альбиносной линией. Они имеют особую честь быть первой линией крыс разработанной для использования в качестве животной модели. Крысы линии Sprague-Dawley были получены из этой линии.

Лабораторные мыши и крысы Рисунок 6
Рисунок 6. Lobund-Wistar крыса. Предоставлено NCI, NIH.

Labome проанализировала 7 публикаций с использованием крыс линии Wistar. Woo S и др. использовали самцов крыс Wistar для развития механистической модели для вызванной химиотерапией анемии [134]. Siniscalco D и др. исследовали роль каспазы-7 в процессе апоптоза вызванного болью у самцов крыс Wistar [135]. Aprigliano I и соавт. получили звездчатые клетки печени от крыс Wistar, чтобы исследовать эффект аторвастатина на апоптоз [136]. Maddahi A и др. индуцировали ишемические повреждения головного мозга у самцов крыс Wistar-Hanover (Mollegaard Breeding Centre) для изучения роли MEK/ERK пути в экспрессии рецепторов после ишемического повреждения головного мозга [137]. Unkrüer B и др. индуцировали эпилептический статус у самок крыс Wistar Unilever для уточнения клеточного распределения YB-1 белка в мозге взрослых крыс, макак и человека [138]. Matrone С и др. использовали эмбрионы от крыс Wistar для изучения роли NGF или BDNF сигналов в апоптозе нейронов [139]. Higashida К и др. использовали самцов крыс Wistar от Charles River для выполнения исследований на животных с целью изучения влияния ресвератрола на митохондриальный биогенез в мышцах [16].

Поставщики животных
The Jackson Laboratory

Jackson Laboratory была основана Clarence Cook Little, которая создала инбредную мышиную линию C57BL, и является наиболее цитируемым поставщиком экспериментальных животных. Более 5000 линий мышей доступны в Jackson Laboratory. Она также поддерживает интегрированный информационный ресурс мышей. В 2011 году она предоставила 3,0 млн мышей для около 20000 исследователей (или лабораторий) в более чем 900 учреждений, по крайней мере в 50 странах .

Лабораторные мыши и крысы Рисунок 7
Рисунок 7. The Jackson Laboratory.

Более 157 публикаций, проанализированные Labome приводят Jackson Laboratory в качестве источника животных. Она является основным источником для таких общих линий как C57BL, BALB / C линии мышей и линий крыс и менее распространенные линий, таких как DBA/2J [12], C3H.SW (H-2b) [26], NOD / ShiLtJ [140], AKR/J (AKR) [34], FvB/NJ [40, 120], C3H/HeJ (C3H), C58/J (C58) и CBA/J [34], 129 X1/SvJ [91], и MRL/MpJ [141].

Лабораторные мыши и крысы Рисунок 8
Рисунок 8. DBA/2J мыши. Предоставлено Jackson Laboratory.

Кроме того, многие из конгенных и трансгенных линий мышей также пришли из Лаборатории Джексона, такие как CD8-KO и PFP-KO [39], ASKO [142], B6.129 (Cg)-TG(CAG-Bgeo/GFP)21Lbe/J мыши [46], B6.129S2-Il6tm1Kopf/J (Il-6-/-) мыши [31], B6.129X1-Gt(РОСА)26Sortm1(EYFP)Cos/J мыши [46], Bmal 1 +/- мыши [15], Icam1-/- мыши [7], Rag1-/- мыши [7], репортер мыши Rosa26LSL-YFP [105], мыши Ubiquitin C-CreERT2 [65], бета-катенинf/F, CMV-Cre, Rosa26R, Flk1LacZ/+ и TOPGAL [143], RAG-/- [42, 71], IFN-/- [42], B6.129P2-Tcrdtm1Mom/J [43], р53 гетерозиготных [54], C3H/HeJ-Hmx1mpe/J [144], GM-CSF/IL-3/IL-5 рецепторов недостаточно [145], TLR3KO [140], OVA323 -339 TCR трансгенных [146], N-TG (Thy1-CRE) 1Vln/J и Gt(РОСА)26Sortm1(EYFP-Cos) [147], DO11.10 TCR трансгенных [148], Tlr2-/- [71], альбумин-CRE [149], SIRT6-/+ гетерозиготных [150], дистрофина с дефицитом [151], и NPC1 гетерозиготных [151],

Charles River Laboratories

Charles River поставляет животных для исследований в течение более 60 лет. Среди публикаций проанаизированных Labome, 62 публикации приводят Charles River в качестве источника. Она является основным поставщиком таких общих линий как C57BL, BALB/с и других штаммов, как B6C3F1 [152], DBA/2 [50], TNF-alphaR1KO [153], B10.BR (H2K) мышей [52], Nude мыши [154] и NMRI [47]. Кроме того, при условии, большинство CD-1 мышей и линий крыс среди обследованных публикаций.

Taconic Farms

Taconic Farms предоставляет генетически крыс и мышей с определёнными генотипами на протяжении 50 лет. В публикациях, проанализированных Labome, 28 публикаций приводят Taconic в качестве источника. В дополнение к общим линиям, таким как C57BL, Taconic предоставляет DPP-IV-/- мышей [63], RAG-2-/- мышей [32], [148], RAG1-/- мышей [58], egr1-/- мышей [69], [70], GF мышей на B6 основании [18], Swiss Webster (SW) мышей [18], B6.129S1-TLR3 tm1Flv/J (TLR3-/-) мышей [31], B6.129S7-RAG1 tm1Mom (RAG1-/-) мышей [31], Il- 1R1-/- мыши [31], B6.SJL-Ptprca (CD45.1) мышей [66], OT-II TCR трансгенных мышей [66], NCR nude мышей [155], и TNFalpha трансгенных мышей [156].

Harlan Laboratories

Двадцать четыре публикации цитировали Harlan Laboratories в качестве поставщика для своих животных. Знаменитый питомник, ферма Sprague Dawley в Мэдисоне, штат Висконсин, где линия крыс, тезка Sprague Dawley крыс, была первоначально выведена, теперь является частью Harlan. Harlan поставляет HSD nude мышей [155], крыс Dark Agouti [157], C57BL мышей [78, 119], FVB мышей [119], бестимусных nude Foxn1-nu мышей [100], WKT крыс и LEW крыс [158], и SJL/J мышей [79].

Другие поставщики

Japan SLC поставляет мышей ICR [115], В6 мышей [159], и B10.D2 мышей [145].

Другие поставщики включают государственные учреждения, такие как Национальный институт рака [88], такие организации, как Техасский института геномной медицины [160], и коммерческие поставщики geneOway [161], JAX Mice and Services [90], Lexicon Pharmaceuticals Inc и MSD Pharmaceutical [162].

Веб-ресурсы - Где искать конкретную линию мышей?
Международный регистр линий мышей (International Mouse Strain Resource, IMSR).

IMSR является результатом сотрудничества дюжины международных регистров, содержащий информацию для 25104 линий мышей и 210178 клеточных линий ЕС по состоянию на апрель 2013 года. Для примера, здесь представлены 158 линий для мышиного гена р53. Поддержка сайта осуществляется за счет гранта NIH.

Ссылки
  1. Kuramoto T, Nakanishi S, Ochiai M, Nakagama H, Voigt B, Serikawa T. Origins of albino and hooded rats: implications from molecular genetic analysis across modern laboratory rat strains. PLoS ONE. 2012;7:e43059 pubmed publisher
  2. Beermann F, Orlow S, Lamoreux M. The Tyr (albino) locus of the laboratory mouse. Mamm Genome. 2004;15:749-58 pubmed
  3. International Mouse Phenotyping Consortium. Available from: www.mousephenotype.org/
  4. Nurieva R, Chung Y, Hwang D, Yang X, Kang H, Ma L, et al. Generation of T follicular helper cells is mediated by interleukin-21 but independent of T helper 1, 2, or 17 cell lineages. Immunity. 2008;29:138-49 pubmed publisher
  5. Chaudhry A, Rudra D, Treuting P, Samstein R, Liang Y, Kas A, et al. CD4+ regulatory T cells control TH17 responses in a Stat3-dependent manner. Science. 2009;326:986-91 pubmed publisher
  6. Barnett B, Ciocca M, Goenka R, Barnett L, Wu J, Laufer T, et al. Asymmetric B cell division in the germinal center reaction. Science. 2012;335:342-4 pubmed publisher
  7. Lightfield K, Persson J, Brubaker S, Witte C, von Moltke J, Dunipace E, et al. Critical function for Naip5 in inflammasome activation by a conserved carboxy-terminal domain of flagellin. Nat Immunol. 2008;9:1171-8 pubmed publisher
  8. Lin M, Jackson P, Tester A, Diaconu E, Overall C, Blalock J, et al. Matrix metalloproteinase-8 facilitates neutrophil migration through the corneal stromal matrix by collagen degradation and production of the chemotactic peptide Pro-Gly-Pro. Am J Pathol. 2008;173:144-53 pubmed publisher
  9. Bassetti M, White J, Kappler J, Marrack P. Transgenic Bcl-3 slows T cell proliferation. Int Immunol. 2009;21:339-48 pubmed publisher
  10. Maynard C, Hatton R, Helms W, Oliver J, Stephensen C, Weaver C. Contrasting roles for all-trans retinoic acid in TGF-beta-mediated induction of Foxp3 and Il10 genes in developing regulatory T cells. J Exp Med. 2009;206:343-57 pubmed publisher
  11. Zhou X, Li F, Kong L, Chodosh J, Cao W. Anti-inflammatory effect of pigment epithelium-derived factor in DBA/2J mice. Mol Vis. 2009;15:438-50 pubmed
  12. Dalmasso G, Nguyen H, Yan Y, Charrier-Hisamuddin L, Sitaraman S, Merlin D. Butyrate transcriptionally enhances peptide transporter PepT1 expression and activity. PLoS ONE. 2008;3:e2476 pubmed publisher
  13. Sauter K, Melton-Celsa A, Larkin K, Troxell M, O'BRIEN A, Magun B. Mouse model of hemolytic-uremic syndrome caused by endotoxin-free Shiga toxin 2 (Stx2) and protection from lethal outcome by anti-Stx2 antibody. Infect Immun. 2008;76:4469-78 pubmed publisher
  14. Wang T, Yu Y, Govindaiah G, Ye X, Artinian L, Coleman T, et al. Circadian rhythm of redox state regulates excitability in suprachiasmatic nucleus neurons. Science. 2012;337:839-42 pubmed publisher
  15. Higashida K, Kim S, Jung S, Asaka M, Holloszy J, Han D. Effects of resveratrol and SIRT1 on PGC-1α activity and mitochondrial biogenesis: a reevaluation. PLoS Biol. 2013;11:e1001603 pubmed publisher
  16. Lee B, Moon J, Shu J, Yuan L, Newman Z, Schekman R, et al. UNC93B1 mediates differential trafficking of endosomal TLRs. elife. 2013;2:e00291 pubmed publisher
  17. Olszak T, An D, Zeissig S, Vera M, Richter J, Franke A, et al. Microbial exposure during early life has persistent effects on natural killer T cell function. Science. 2012;336:489-93 pubmed publisher
  18. Martínez-Sanz E, Del Río A, Barrio C, Murillo J, Maldonado E, Garcillán B, et al. Alteration of medial-edge epithelium cell adhesion in two Tgf-beta3 null mouse strains. Differentiation. 2008;76:417-30 pubmed
  19. Spurney C, Knoblach S, Pistilli E, Nagaraju K, Martin G, Hoffman E. Dystrophin-deficient cardiomyopathy in mouse: expression of Nox4 and Lox are associated with fibrosis and altered functional parameters in the heart. Neuromuscul Disord. 2008;18:371-81 pubmed publisher
  20. Hughes W, Rodriguez W, Rosenberger D, Chen J, Sen U, Tyagi N, et al. Role of copper and homocysteine in pressure overload heart failure. Cardiovasc Toxicol. 2008;8:137-44 pubmed publisher
  21. Korin N, Kanapathipillai M, Matthews B, Crescente M, Brill A, Mammoto T, et al. Shear-activated nanotherapeutics for drug targeting to obstructed blood vessels. Science. 2012;337:738-42 pubmed publisher
  22. Walser R, Burke J, Gogvadze E, Bohnacker T, Zhang X, Hess D, et al. PKCβ phosphorylates PI3Kγ to activate it and release it from GPCR control. PLoS Biol. 2013;11:e1001587 pubmed publisher
  23. Crawford G, Hart G, Whiteheart S. Murine platelets are not regulated by O-linked beta-N-acetylglucosamine. Arch Biochem Biophys. 2008;474:220-4 pubmed publisher
  24. Tawara I, Maeda Y, Sun Y, Lowler K, Liu C, Toubai T, et al. Combined Th2 cytokine deficiency in donor T cells aggravates experimental acute graft-vs-host disease. Exp Hematol. 2008;36:988-96 pubmed publisher
  25. Capitini C, Herby S, Milliron M, Anver M, Mackall C, Fry T. Bone marrow deficient in IFN-{gamma} signaling selectively reverses GVHD-associated immunosuppression and enhances a tumor-specific GVT effect. Blood. 2009;113:5002-9 pubmed publisher
  26. Ventura C, Higdon R, Kolker E, Skerrett S, Rubens C. Host airway proteins interact with Staphylococcus aureus during early pneumonia. Infect Immun. 2008;76:888-98 pubmed publisher
  27. Weisberg S, Leibel R, Tortoriello D. Dietary curcumin significantly improves obesity-associated inflammation and diabetes in mouse models of diabesity. Endocrinology. 2008;149:3549-58 pubmed publisher
  28. WU D, Molofsky A, Liang H, Ricardo-Gonzalez R, Jouihan H, Bando J, et al. Eosinophils sustain adipose alternatively activated macrophages associated with glucose homeostasis. Science. 2011;332:243-7 pubmed publisher
  29. Xu J, Carretero O, Shesely E, Rhaleb N, Yang J, Bader M, et al. The kinin B1 receptor contributes to the cardioprotective effect of angiotensin-converting enzyme inhibitors and angiotensin receptor blockers in mice. Exp Physiol. 2009;94:322-9 pubmed publisher
  30. Naik S, Bouladoux N, Wilhelm C, Molloy M, Salcedo R, Kastenmuller W, et al. Compartmentalized control of skin immunity by resident commensals. Science. 2012;337:1115-9 pubmed publisher
  31. Takatori H, Kanno Y, Watford W, Tato C, Weiss G, Ivanov I, et al. Lymphoid tissue inducer-like cells are an innate source of IL-17 and IL-22. J Exp Med. 2009;206:35-41 pubmed publisher
  32. Halappanavar S, Stampfli M, Berndt-Weis L, Williams A, Douglas G, Yauk C. Toxicogenomic analysis of mainstream tobacco smoke-exposed mice reveals repression of plasminogen activator inhibitor-1 gene in heart. Inhal Toxicol. 2009;21:78-85 pubmed
  33. Persson A, Gebauer M, Jordan S, Metz-Weidmann C, Schulte A, Schneider H, et al. Correlational analysis for identifying genes whose regulation contributes to chronic neuropathic pain. Mol Pain. 2009;5:7 pubmed publisher
  34. Sanders C, Franchi L, Yarovinsky F, Uematsu S, Akira S, Nunez G, et al. Induction of adaptive immunity by flagellin does not require robust activation of innate immunity. Eur J Immunol. 2009;39:359-71 pubmed publisher
  35. Rao Y, Chaudhury A, Goyal R. Active and inactive pools of nNOS in the nerve terminals in mouse gut: implications for nitrergic neurotransmission. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2008;294:G627-34 pubmed
  36. Wu F, Wilson J. Peroxynitrite-dependent activation of protein phosphatase type 2A mediates microvascular endothelial barrier dysfunction. Cardiovasc Res. 2009;81:38-45 pubmed publisher
  37. Sonnenberg G, Monticelli L, Alenghat T, Fung T, Hutnick N, Kunisawa J, et al. Innate lymphoid cells promote anatomical containment of lymphoid-resident commensal bacteria. Science. 2012;336:1321-5 pubmed publisher
  38. Oakley M, McCutchan T, Anantharaman V, Ward J, Faucette L, Erexson C, et al. Host biomarkers and biological pathways that are associated with the expression of experimental cerebral malaria in mice. Infect Immun. 2008;76:4518-29 pubmed publisher
  39. Losick V, Stephan K, Smirnova I, Isberg R, Poltorak A. A hemidominant Naip5 allele in mouse strain MOLF/Ei-derived macrophages restricts Legionella pneumophila intracellular growth. Infect Immun. 2009;77:196-204 pubmed publisher
  40. Lebeis S, Powell K, Merlin D, Sherman M, Kalman D. Interleukin-1 receptor signaling protects mice from lethal intestinal damage caused by the attaching and effacing pathogen Citrobacter rodentium. Infect Immun. 2009;77:604-14 pubmed publisher
  41. Franklin B, Parroche P, Ataíde M, Lauw F, Ropert C, de Oliveira R, et al. Malaria primes the innate immune response due to interferon-gamma induced enhancement of toll-like receptor expression and function. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009;106:5789-94 pubmed publisher
  42. Godinez I, Raffatellu M, Chu H, Paixao T, Haneda T, Santos R, et al. Interleukin-23 orchestrates mucosal responses to Salmonella enterica serotype Typhimurium in the intestine. Infect Immun. 2009;77:387-98 pubmed publisher
  43. Netea M, Joosten L, Keuter M, Wagener F, Stalenhoef A, Van der Meer J, et al. Circulating lipoproteins are a crucial component of host defense against invasive Salmonella typhimurium infection. PLoS ONE. 2009;4:e4237 pubmed publisher
  44. Narita M, Young A, Arakawa S, Samarajiwa S, Nakashima T, Yoshida S, et al. Spatial coupling of mTOR and autophagy augments secretory phenotypes. Science. 2011;332:966-70 pubmed publisher
  45. Saab A, Neumeyer A, Jahn H, Cupido A, Simek A, Boele H, et al. Bergmann glial AMPA receptors are required for fine motor coordination. Science. 2012;337:749-53 pubmed publisher
  46. Buchholz K, Rahlfs S, Schirmer R, Becker K, Matuschewski K. Depletion of Plasmodium berghei plasmoredoxin reveals a non-essential role for life cycle progression of the malaria parasite. PLoS ONE. 2008;3:e2474 pubmed publisher
  47. Hennige A, Staiger H, Wicke C, Machicao F, Fritsche A, Haring H, et al. Fetuin-A induces cytokine expression and suppresses adiponectin production. PLoS ONE. 2008;3:e1765 pubmed publisher
  48. Wang S, Hecksher-Sorensen J, Xu Y, Zhao A, Dor Y, Rosenberg L, et al. Myt1 and Ngn3 form a feed-forward expression loop to promote endocrine islet cell differentiation. Dev Biol. 2008;317:531-40 pubmed publisher
  49. Takeda K, Kojima Y, Ikejima K, Harada K, Yamashina S, Okumura K, et al. Death receptor 5 mediated-apoptosis contributes to cholestatic liver disease. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105:10895-900 pubmed publisher
  50. Aleksunes L, Cui Y, Klaassen C. Prominent expression of xenobiotic efflux transporters in mouse extraembryonic fetal membranes compared with placenta. Drug Metab Dispos. 2008;36:1960-70 pubmed publisher
  51. Thaunat O, Granja A, Barral P, Filby A, Montaner B, Collinson L, et al. Asymmetric segregation of polarized antigen on B cell division shapes presentation capacity. Science. 2012;335:475-9 pubmed publisher
  52. Peron S, Laffleur B, Denis-Lagache N, Cook-Moreau J, Tinguely A, Delpy L, et al. AID-driven deletion causes immunoglobulin heavy chain locus suicide recombination in B cells. Science. 2012;336:931-4 pubmed publisher
  53. Chatoo W, Abdouh M, David J, Champagne M, Ferreira J, Rodier F, et al. The polycomb group gene Bmi1 regulates antioxidant defenses in neurons by repressing p53 pro-oxidant activity. J Neurosci. 2009;29:529-42 pubmed publisher
  54. Eikermann-Haerter K, Dilekoz E, Kudo C, Savitz S, Waeber C, Baum M, et al. Genetic and hormonal factors modulate spreading depression and transient hemiparesis in mouse models of familial hemiplegic migraine type 1. J Clin Invest. 2009;119:99-109 pubmed publisher
  55. Yi W, Clark P, Mason D, Keenan M, Hill C, Goddard W, et al. Phosphofructokinase 1 glycosylation regulates cell growth and metabolism. Science. 2012;337:975-80 pubmed publisher
  56. Chotalia M, Smallwood S, Ruf N, Dawson C, Lucifero D, Frontera M, et al. Transcription is required for establishment of germline methylation marks at imprinted genes. Genes Dev. 2009;23:105-17 pubmed publisher
  57. Gill N, Ashkar A. Overexpression of interleukin-15 compromises CD4-dependent adaptive immune responses against herpes simplex virus 2. J Virol. 2009;83:918-26 pubmed publisher
  58. Leemput J, Masson C, Bigot K, Errachid A, Dansault A, Provost A, et al. ATM localization and gene expression in the adult mouse eye. Mol Vis. 2009;15:393-416 pubmed
  59. Li X, Ko H, Chen T, Descalzi G, Koga K, Wang H, et al. Alleviating neuropathic pain hypersensitivity by inhibiting PKMzeta in the anterior cingulate cortex. Science. 2010;330:1400-4 pubmed publisher
  60. Oh J, Susor A, Conti M. Protein tyrosine kinase Wee1B is essential for metaphase II exit in mouse oocytes. Science. 2011;332:462-5 pubmed publisher
  61. Mackler S, Pacchioni A, Degnan R, Homan Y, Conti A, Kalivas P, et al. Requirement for the POZ/BTB protein NAC1 in acute but not chronic psychomotor stimulant response. Behav Brain Res. 2008;187:48-55 pubmed
  62. Vora K, Porter G, Peng R, Cui Y, Pryor K, Eiermann G, et al. Genetic ablation or pharmacological blockade of dipeptidyl peptidase IV does not impact T cell-dependent immune responses. BMC Immunol. 2009;10:19 pubmed publisher
  63. Hsu C, Lin W, Seshasayee D, Chen Y, Ding X, Lin Z, et al. Equilibrative nucleoside transporter 3 deficiency perturbs lysosome function and macrophage homeostasis. Science. 2012;335:89-92 pubmed publisher
  64. Lamming D, Ye L, Katajisto P, Goncalves M, Saitoh M, Stevens D, et al. Rapamycin-induced insulin resistance is mediated by mTORC2 loss and uncoupled from longevity. Science. 2012;335:1638-43 pubmed publisher
  65. Hand T, Dos Santos L, Bouladoux N, Molloy M, Pagán A, Pepper M, et al. Acute gastrointestinal infection induces long-lived microbiota-specific T cell responses. Science. 2012;337:1553-6 pubmed
  66. Cornejo M, Kharas M, Werneck M, Le Bras S, Moore S, Ball B, et al. Constitutive JAK3 activation induces lymphoproliferative syndromes in murine bone marrow transplantation models. Blood. 2009;113:2746-54 pubmed publisher
  67. Cruz-Guilloty F, Pipkin M, Djuretic I, Levanon D, Lotem J, Lichtenheld M, et al. Runx3 and T-box proteins cooperate to establish the transcriptional program of effector CTLs. J Exp Med. 2009;206:51-9 pubmed publisher
  68. Yang Y, Chen W, Edgar A, Li B, Molkentin J, Berman J, et al. Rcan1 negatively regulates Fc epsilonRI-mediated signaling and mast cell function. J Exp Med. 2009;206:195-207 pubmed publisher
  69. Lazarevic V, Zullo A, Schweitzer M, Staton T, Gallo E, Crabtree G, et al. The gene encoding early growth response 2, a target of the transcription factor NFAT, is required for the development and maturation of natural killer T cells. Nat Immunol. 2009;10:306-13 pubmed publisher
  70. Round J, Lee S, Li J, Tran G, Jabri B, Chatila T, et al. The Toll-like receptor 2 pathway establishes colonization by a commensal of the human microbiota. Science. 2011;332:974-7 pubmed publisher
  71. Chawla G, Viswanathan P, Devi S. Phycotoxicity of linear alkylbenzene sulfonate. Ecotoxicol Environ Saf. 1988;15:119-24 pubmed
  72. Chen S, Kim M, Kim M, Song J, Park S, Wells D, et al. Mice that overexpress human heat shock protein 27 have increased renal injury following ischemia reperfusion. Kidney Int. 2009;75:499-510 pubmed publisher
  73. Werninghaus K, Babiak A, Gross O, Holscher C, Dietrich H, Agger E, et al. Adjuvanticity of a synthetic cord factor analogue for subunit Mycobacterium tuberculosis vaccination requires FcRgamma-Syk-Card9-dependent innate immune activation. J Exp Med. 2009;206:89-97 pubmed publisher
  74. Zermeño V, Espindola S, Mendoza E, Hernandez-Echeagaray E. Differential expression of neurotrophins in postnatal C57BL/6 mice striatum. Int J Biol Sci. 2009;5:118-27 pubmed
  75. Brough D, Pelegrin P, Rothwell N. Pannexin-1-dependent caspase-1 activation and secretion of IL-1beta is regulated by zinc. Eur J Immunol. 2009;39:352-8 pubmed publisher
  76. Calvo-Pinilla E, Rodríguez-Calvo T, Anguita J, Sevilla N, Ortego J. Establishment of a bluetongue virus infection model in mice that are deficient in the alpha/beta interferon receptor. PLoS ONE. 2009;4:e5171 pubmed publisher
  77. Antebi Y, Reich-Zeliger S, Hart Y, Mayo A, Eizenberg I, Rimer J, et al. Mapping differentiation under mixed culture conditions reveals a tunable continuum of T cell fates. PLoS Biol. 2013;11:e1001616 pubmed publisher
  78. Hou W, Kang H, Kim B. Th17 cells enhance viral persistence and inhibit T cell cytotoxicity in a model of chronic virus infection. J Exp Med. 2009;206:313-28 pubmed publisher
  79. Wang W, Yen H, Yen H, Chen C, Soni R, Jasani N, et al. The endothelin-converting enzyme-1/endothelin-1 pathway plays a critical role in inflammation-associated premature delivery in a mouse model. Am J Pathol. 2008;173:1077-84 pubmed publisher
  80. Liao C, Luo S, Li L, Lin C, Chen Y, Jiang M. CSE1L/CAS, the cellular apoptosis susceptibility protein, enhances invasion and metastasis but not proliferation of cancer cells. J Exp Clin Cancer Res. 2008;27:15 pubmed publisher
  81. Takeuchi T, Ohtsuki G, Yoshida T, Fukaya M, Wainai T, Yamashita M, et al. Enhancement of both long-term depression induction and optokinetic response adaptation in mice lacking delphilin. PLoS ONE. 2008;3:e2297 pubmed publisher
  82. Berger K, Lindh R, Wierup N, Zmuda-Trzebiatowska E, Lindqvist A, Manganiello V, et al. Phosphodiesterase 3B is localized in caveolae and smooth ER in mouse hepatocytes and is important in the regulation of glucose and lipid metabolism. PLoS ONE. 2009;4:e4671 pubmed publisher
  83. Burdon K, Sharma S, Hewitt A, McMellon A, Wang J, Mackey D, et al. Genetic analysis of the clusterin gene in pseudoexfoliation syndrome. Mol Vis. 2008;14:1727-36 pubmed
  84. Okunuki Y, Usui Y, Kezuka T, Hattori T, Masuko K, Nakamura H, et al. Proteomic surveillance of retinal autoantigens in endogenous uveitis: implication of esterase D and brain-type creatine kinase as novel autoantigens. Mol Vis. 2008;14:1094-104 pubmed
  85. Fogg D, Sibon C, Miled C, Jung S, Aucouturier P, Littman D, et al. A clonogenic bone marrow progenitor specific for macrophages and dendritic cells. Science. 2006;311:83-7 pubmed
  86. Ichinohe T, Lee H, Ogura Y, Flavell R, Iwasaki A. Inflammasome recognition of influenza virus is essential for adaptive immune responses. J Exp Med. 2009;206:79-87 pubmed publisher
  87. Yi Z, Cho S, Zhao H, Wu Y, Luo J, Li D, et al. A novel peptide from human apolipoprotein(a) inhibits angiogenesis and tumor growth by targeting c-Src phosphorylation in VEGF-induced human umbilical endothelial cells. Int J Cancer. 2009;124:843-52 pubmed publisher
  88. Oliveira G, Lieberman J, Barillas-Mury C. Epithelial nitration by a peroxidase/NOX5 system mediates mosquito antiplasmodial immunity. Science. 2012;335:856-9 pubmed publisher
  89. Jagger B, Wise H, Kash J, Walters K, Wills N, Xiao Y, et al. An overlapping protein-coding region in influenza A virus segment 3 modulates the host response. Science. 2012;337:199-204 pubmed publisher
  90. Ekiert D, Friesen R, Bhabha G, Kwaks T, Jongeneelen M, Yu W, et al. A highly conserved neutralizing epitope on group 2 influenza A viruses. Science. 2011;333:843-50 pubmed publisher
  91. Li Y, Wang S, Xin W, Scarpellini G, Shi Z, Gunn B, et al. A sopB deletion mutation enhances the immunogenicity and protective efficacy of a heterologous antigen delivered by live attenuated Salmonella enterica vaccines. Infect Immun. 2008;76:5238-46 pubmed publisher
  92. Capraro G, Johnson J, Kock N, Parks G. Virus growth and antibody responses following respiratory tract infection of ferrets and mice with WT and P/V mutants of the paramyxovirus Simian Virus 5. Virology. 2008;376:416-28 pubmed publisher
  93. Kendirgi F, Yun N, Linde N, Zacks M, Smith J, Smith J, et al. Novel linear DNA vaccines induce protective immune responses against lethal infection with influenza virus type A/H5N1. Hum Vaccin. 2008;4:410-9 pubmed
  94. Ramaprakash H, Ito T, Standiford T, Kunkel S, Hogaboam C. Toll-like receptor 9 modulates immune responses to Aspergillus fumigatus conidia in immunodeficient and allergic mice. Infect Immun. 2009;77:108-19 pubmed publisher
  95. Castilow E, Olson M, Meyerholz D, Varga S. Differential role of gamma interferon in inhibiting pulmonary eosinophilia and exacerbating systemic disease in fusion protein-immunized mice undergoing challenge infection with respiratory syncytial virus. J Virol. 2008;82:2196-207 pubmed
  96. Chung Y, Choi J, Oh T, Eun C, Han D. Lactobacillus casei prevents the development of dextran sulphate sodium-induced colitis in Toll-like receptor 4 mutant mice. Clin Exp Immunol. 2008;151:182-9 pubmed
  97. Arscott W, LaBauve A, May V, Wesley U. Suppression of neuroblastoma growth by dipeptidyl peptidase IV: relevance of chemokine regulation and caspase activation. Oncogene. 2009;28:479-91 pubmed publisher
  98. Singh D, Chan J, Zoppoli P, Niola F, Sullivan R, Castaño A, et al. Transforming fusions of FGFR and TACC genes in human glioblastoma. Science. 2012;337:1231-5 pubmed publisher
  99. Kessler J, Kahle K, Sun T, Meerbrey K, Schlabach M, Schmitt E, et al. A SUMOylation-dependent transcriptional subprogram is required for Myc-driven tumorigenesis. Science. 2012;335:348-53 pubmed publisher
  100. Beauvais D, Ell B, McWhorter A, Rapraeger A. Syndecan-1 regulates alphavbeta3 and alphavbeta5 integrin activation during angiogenesis and is blocked by synstatin, a novel peptide inhibitor. J Exp Med. 2009;206:691-705 pubmed publisher
  101. Chia R, Achilli F, Festing M, Fisher E. The origins and uses of mouse outbred stocks. Nat Genet. 2005;37:1181-6 pubmed
  102. Ray S, Xu F, Wang H, Das S. Cooperative control via lymphoid enhancer factor 1/T cell factor 3 and estrogen receptor-alpha for uterine gene regulation by estrogen. Mol Endocrinol. 2008;22:1125-40 pubmed publisher
  103. Tang N, Marshall W, McMahon M, Metzger R, Martin G. Control of mitotic spindle angle by the RAS-regulated ERK1/2 pathway determines lung tube shape. Science. 2011;333:342-5 pubmed publisher
  104. Schulz C, Gomez Perdiguero E, Chorro L, Szabo-Rogers H, Cagnard N, Kierdorf K, et al. A lineage of myeloid cells independent of Myb and hematopoietic stem cells. Science. 2012;336:86-90 pubmed publisher
  105. Ye H, Daoud-El Baba M, Peng R, Fussenegger M. A synthetic optogenetic transcription device enhances blood-glucose homeostasis in mice. Science. 2011;332:1565-8 pubmed publisher
  106. Shankarling G, Coates P, Dass B, MacDonald C. A family of splice variants of CstF-64 expressed in vertebrate nervous systems. BMC Mol Biol. 2009;10:22 pubmed publisher
  107. Lachke S, Alkuraya F, Kneeland S, Ohn T, Aboukhalil A, Howell G, et al. Mutations in the RNA granule component TDRD7 cause cataract and glaucoma. Science. 2011;331:1571-6 pubmed publisher
  108. Ko H, Bailey R, Smith W, Liu Z, Shin J, Lee Y, et al. CHIP regulates leucine-rich repeat kinase-2 ubiquitination, degradation, and toxicity. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009;106:2897-902 pubmed publisher
  109. Li Z, Mathew P, Yang J, Starbuck M, Zurita A, Liu J, et al. Androgen receptor-negative human prostate cancer cells induce osteogenesis in mice through FGF9-mediated mechanisms. J Clin Invest. 2008;118:2697-710 pubmed publisher
  110. Dubrovska A, Kim S, Salamone R, Walker J, Maira S, Garcia-Echeverria C, et al. The role of PTEN/Akt/PI3K signaling in the maintenance and viability of prostate cancer stem-like cell populations. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009;106:268-73 pubmed publisher
  111. Miyagawa Y, Okita H, Itagaki M, Toyoda M, Katagiri Y, Fujimoto J, et al. EWS/ETS regulates the expression of the Dickkopf family in Ewing family tumor cells. PLoS ONE. 2009;4:e4634 pubmed publisher
  112. Gonzalez M, Li X, Toy K, DuPrie M, Ventura A, Banerjee M, et al. Downregulation of EZH2 decreases growth of estrogen receptor-negative invasive breast carcinoma and requires BRCA1. Oncogene. 2009;28:843-53 pubmed publisher
  113. Neunuebel M, Chen Y, Gaspar A, Backlund P, Yergey A, Machner M. De-AMPylation of the small GTPase Rab1 by the pathogen Legionella pneumophila. Science. 2011;333:453-6 pubmed publisher
  114. Sato Y, Iketani M, Kurihara Y, Yamaguchi M, Yamashita N, Nakamura F, et al. Cartilage acidic protein-1B (LOTUS), an endogenous Nogo receptor antagonist for axon tract formation. Science. 2011;333:769-73 pubmed publisher
  115. Kwon H, Koo J, Zufall F, Leinders-Zufall T, Margolis F. Ca extrusion by NCX is compromised in olfactory sensory neurons of OMP mice. PLoS ONE. 2009;4:e4260 pubmed publisher
  116. Bao L, Haas M, Pippin J, Wang Y, Miwa T, Chang A, et al. Focal and segmental glomerulosclerosis induced in mice lacking decay-accelerating factor in T cells. J Clin Invest. 2009;119:1264-74 pubmed publisher
  117. Rosengren A, Jokubka R, Tojjar D, Granhall C, Hansson O, Li D, et al. Overexpression of alpha2A-adrenergic receptors contributes to type 2 diabetes. Science. 2010;327:217-20 pubmed publisher
  118. Klohn P, Farmer M, Linehan J, O'Malley C, Fernández de Marco M, Taylor W, et al. PrP antibodies do not trigger mouse hippocampal neuron apoptosis. Science. 2012;335:52 pubmed publisher
  119. Modi B, Neustadter J, Binda E, Lewis J, Filler R, Roberts S, et al. Langerhans cells facilitate epithelial DNA damage and squamous cell carcinoma. Science. 2012;335:104-8 pubmed publisher
  120. Mayo C, Ren R, Rich C, Stepp M, Trinkaus-Randall V. Regulation by P2X7: epithelial migration and stromal organization in the cornea. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2008;49:4384-91 pubmed publisher
  121. Rodriguez R, Rubio R, Masip M, Catalina P, Nieto A, de la Cueva T, et al. Loss of p53 induces tumorigenesis in p21-deficient mesenchymal stem cells. Neoplasia. 2009;11:397-407 pubmed
  122. Chen J, Li H, Addabbo F, Zhang F, Pelger E, Patschan D, et al. Adoptive transfer of syngeneic bone marrow-derived cells in mice with obesity-induced diabetes: selenoorganic antioxidant ebselen restores stem cell competence. Am J Pathol. 2009;174:701-11 pubmed publisher
  123. Peng Q, Masuda N, Jiang M, Li Q, Zhao M, Ross C, et al. The antidepressant sertraline improves the phenotype, promotes neurogenesis and increases BDNF levels in the R6/2 Huntington's disease mouse model. Exp Neurol. 2008;210:154-63 pubmed
  124. Shinohara M, Kim J, Garcia V, Cantor H. Engagement of the type I interferon receptor on dendritic cells inhibits T helper 17 cell development: role of intracellular osteopontin. Immunity. 2008;29:68-78 pubmed publisher
  125. Ewert T, Gritman K, Bader M, Habecker B. Post-infarct cardiac sympathetic hyperactivity regulates galanin expression. Neurosci Lett. 2008;436:163-6 pubmed publisher
  126. Surgucheva I, Weisman A, Goldberg J, SHNYRA A, Surguchov A. Gamma-synuclein as a marker of retinal ganglion cells. Mol Vis. 2008;14:1540-8 pubmed
  127. Zhou H, Yang H, Li Y, Wang Y, Yan L, Guo X, et al. Changes in Glial cell line-derived neurotrophic factor expression in the rostral and caudal stumps of the transected adult rat spinal cord. Neurochem Res. 2008;33:927-37 pubmed
  128. Schafe G, Swank M, Rodrigues S, Debiec J, Doyère V. Phosphorylation of ERK/MAP kinase is required for long-term potentiation in anatomically restricted regions of the lateral amygdala in vivo. Learn Mem. 2008;15:55-62 pubmed publisher
  129. DiNieri J, Nemeth C, Parsegian A, Carle T, Gurevich V, Gurevich E, et al. Altered sensitivity to rewarding and aversive drugs in mice with inducible disruption of cAMP response element-binding protein function within the nucleus accumbens. J Neurosci. 2009;29:1855-9 pubmed publisher
  130. Chen J, Scott K, Zhao Z, Moran T, Bi S. Characterization of the feeding inhibition and neural activation produced by dorsomedial hypothalamic cholecystokinin administration. Neuroscience. 2008;152:178-88 pubmed publisher
  131. Reungjui S, Roncal C, Sato W, Glushakova O, Croker B, Suga S, et al. Hypokalemic nephropathy is associated with impaired angiogenesis. J Am Soc Nephrol. 2008;19:125-34 pubmed publisher
  132. Ben-Ami Bartal I, Decety J, Mason P. Empathy and pro-social behavior in rats. Science. 2011;334:1427-30 pubmed publisher
  133. Woo S, Krzyzanski W, Jusko W. Pharmacodynamic model for chemotherapy-induced anemia in rats. Cancer Chemother Pharmacol. 2008;62:123-33 pubmed
  134. Siniscalco D, Giordano C, Fuccio C, Luongo L, Ferraraccio F, Rossi F, et al. Involvement of subtype 1 metabotropic glutamate receptors in apoptosis and caspase-7 over-expression in spinal cord of neuropathic rats. Pharmacol Res. 2008;57:223-33 pubmed publisher
  135. Aprigliano I, Dudas J, Ramadori G, Saile B. Atorvastatin induces apoptosis by a caspase-9-dependent pathway: an in vitro study on activated rat hepatic stellate cells. Liver Int. 2008;28:546-57 pubmed publisher
  136. Maddahi A, Edvinsson L. Enhanced expressions of microvascular smooth muscle receptors after focal cerebral ischemia occur via the MAPK MEK/ERK pathway. BMC Neurosci. 2008;9:85 pubmed publisher
  137. Unkrüer B, Pekcec A, Fuest C, Wehmeyer A, Balda M, Horn A, et al. Cellular localization of Y-box binding protein 1 in brain tissue of rats, macaques, and humans. BMC Neurosci. 2009;10:28 pubmed publisher
  138. Matrone C, Ciotti M, Mercanti D, Marolda R, Calissano P. NGF and BDNF signaling control amyloidogenic route and Abeta production in hippocampal neurons. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105:13139-44 pubmed publisher
  139. Richer M, Lavallée D, Shanina I, Horwitz M. Toll-like receptor 3 signaling on macrophages is required for survival following coxsackievirus B4 infection. PLoS ONE. 2009;4:e4127 pubmed publisher
  140. Baur K, Rauer M, Richter K, Pagenstecher A, Götz J, Hausmann J, et al. Antiviral CD8 T cells recognize borna disease virus antigen transgenically expressed in either neurons or astrocytes. J Virol. 2008;82:3099-108 pubmed publisher
  141. Alerte T, Akinfolarin A, Friedrich E, Mader S, Hong C, Perez R. Alpha-synuclein aggregation alters tyrosine hydroxylase phosphorylation and immunoreactivity: lessons from viral transduction of knockout mice. Neurosci Lett. 2008;435:24-9 pubmed publisher
  142. De Langhe S, Carraro G, Tefft D, Li C, Xu X, Chai Y, et al. Formation and differentiation of multiple mesenchymal lineages during lung development is regulated by beta-catenin signaling. PLoS ONE. 2008;3:e1516 pubmed publisher
  143. Munroe R, Prabhu V, Acland G, Johnson K, Harris B, O'Brien T, et al. Mouse H6 Homeobox 1 (Hmx1) mutations cause cranial abnormalities and reduced body mass. BMC Dev Biol. 2009;9:27 pubmed publisher
  144. Yokota A, Takeuchi H, Maeda N, Ohoka Y, Kato C, Song S, et al. GM-CSF and IL-4 synergistically trigger dendritic cells to acquire retinoic acid-producing capacity. Int Immunol. 2009;21:361-77 pubmed publisher
  145. Hu W, Nessler S, Hemmer B, Eagar T, Kane L, Leliveld S, et al. Pharmacological prion protein silencing accelerates central nervous system autoimmune disease via T cell receptor signalling. Brain. 2010;133:375-88 pubmed publisher
  146. Moore D, Blackmore M, Hu Y, Kaestner K, Bixby J, Lemmon V, et al. KLF family members regulate intrinsic axon regeneration ability. Science. 2009;326:298-301 pubmed publisher
  147. Qureshi O, Zheng Y, Nakamura K, Attridge K, Manzotti C, Schmidt E, et al. Trans-endocytosis of CD80 and CD86: a molecular basis for the cell-extrinsic function of CTLA-4. Science. 2011;332:600-3 pubmed publisher
  148. Settembre C, Di Malta C, Polito V, Garcia Arencibia M, Vetrini F, Erdin S, et al. TFEB links autophagy to lysosomal biogenesis. Science. 2011;332:1429-33 pubmed publisher
  149. Mao Z, Hine C, Tian X, Van Meter M, Au M, Vaidya A, et al. SIRT6 promotes DNA repair under stress by activating PARP1. Science. 2011;332:1443-6 pubmed publisher
  150. Steen M, Adams M, Tesch Y, Froehner S. Amelioration of muscular dystrophy by transgenic expression of Niemann-Pick C1. Mol Biol Cell. 2009;20:146-52 pubmed publisher
  151. Schneider D, Manzan M, Crawford R, Chen W, Kaminski N. 2,3,7,8-Tetrachlorodibenzo-p-dioxin-mediated impairment of B cell differentiation involves dysregulation of paired box 5 (Pax5) isoform, Pax5a. J Pharmacol Exp Ther. 2008;326:463-74 pubmed publisher
  152. Mazzon E, Esposito E, Di Paola R, Muià C, Crisafulli C, Genovese T, et al. Effect of tumour necrosis factor-alpha receptor 1 genetic deletion on carrageenan-induced acute inflammation: a comparison with etanercept. Clin Exp Immunol. 2008;153:136-49 pubmed publisher
  153. Rendl M, Polak L, Fuchs E. BMP signaling in dermal papilla cells is required for their hair follicle-inductive properties. Genes Dev. 2008;22:543-57 pubmed publisher
  154. Paprotka T, Delviks-Frankenberry K, Cingoz O, Martinez A, Kung H, Tepper C, et al. Recombinant origin of the retrovirus XMRV. Science. 2011;333:97-101 pubmed publisher
  155. Tang W, Lu Y, Tian Q, Zhang Y, Guo F, Liu G, et al. The growth factor progranulin binds to TNF receptors and is therapeutic against inflammatory arthritis in mice. Science. 2011;332:478-84 pubmed publisher
  156. Vann S. Dismantling the Papez circuit for memory in rats. elife. 2013;2:e00736 pubmed publisher
  157. Robertson J, Wu J, Arends J, Zhou C, Adrogue H, Chan J, et al. Spontaneous recovery from early glomerular inflammation is associated with resistance to anti-GBM glomerulonephritis: tolerance and autoimmune tissue injury. J Autoimmun. 2008;30:246-56 pubmed
  158. Arakaki R, Nagaoka A, Ishimaru N, Yamada A, Yoshida S, Hayashi Y. Role of plasmacytoid dendritic cells for aberrant class II expression in exocrine glands from estrogen-deficient mice of healthy background. Am J Pathol. 2009;174:1715-24 pubmed publisher
  159. Kim B, Shenoy A, Kumar P, Das R, Tiwari S, MacMicking J. A family of IFN-γ-inducible 65-kD GTPases protects against bacterial infection. Science. 2011;332:717-21 pubmed publisher
  160. Marschner K, Kollmann K, Schweizer M, Braulke T, Pohl S. A key enzyme in the biogenesis of lysosomes is a protease that regulates cholesterol metabolism. Science. 2011;333:87-90 pubmed publisher
  161. Emery E, Young G, Berrocoso E, Chen L, McNaughton P. HCN2 ion channels play a central role in inflammatory and neuropathic pain. Science. 2011;333:1462-6 pubmed publisher
ISSN : 2329-5139