Маркеры клеток
Konstantin Yakimchuk (Konstantin dot Yakimchuk at ki dot se)
Karolinska Institutet, Sweden
Перевод
Алексей Степаненко (a dot a dot stepanenko at gmail dot com)
Институт молекулярной биологии и генетики
DOI
//dx.doi.org/10.13070/mm.ru.3.183
Дата
последнего обновления : 2016-10-22; оригинальная версия : 2013-05-02
Цитировать как
MATER METHODS ru 2013;3:183
Абстракт

Обзор иммуногистохимических маркеров для всех основных типов клеток, за исключением нервных клеток.

English Abstract

A compilation of immunohistochemical markers for all major cell types, excluding neural cells.

Новое
Маркер кардиомиоцитов

Перицентриолярный материал 1 (PCM1) и кТропонины I и T могут быть использованы для мечения ядер кардиомиоцитов [1, 2].

Адипоциты

Адипоциты дифференцируют из мезенхимальных стволовых клеток и составляют жировую ткань. Три класса факторов транскрипции, как известно, непосредственно влияют на развитие адипоцитов. К ним относятся PPARγ, C/EBPs, основная спираль-петля-спираль семейство (ADD1/SREBP1c) [3]. Есть два типа адипоцитов: белая, бежевая и бурая жировая ткань. Белая жировая ткань поддерживает энергетический метаболизм, накапливая энергию в виде липидов. Бурая жировая ткань (ВАТ) является главным местом термогенеза у млекопитающих. Митохондрии в коричневых адипоцитах содержат разобщающий белок-1 (UCP1). UCP1-экспрессирующие адипоциты, развиваемые в белой жировой ткани (WAT), были названы бежевые адипоциты [4].

Ряд специфических генов-маркеров были обнаружены для различных типов адипоцитов. Генные маркеры, такие как лептин, HOXC8 и HOXC9 являются специфическими для белых адипоцитов [5]. Бурые адипоциты экспрессируют UCP1 [4]. Другими важными маркерами бурых адипоцитов являются CIDEA и PRDM16 [5], Zic1 [6], Lhx8 [6], Eva1 [7] и Epsti1 [8] и маркеры беживых адипоцитов включают Cd137 [7], Tmem26 [7], Tbx1 [7], Cited1 [8] и Shox2 [9].

Бежевые адипоциты имеют уникальный профиль экспрессии генов. Специфическими маркерами бежевых адипоцитов являются следующие: Cd137 [7], Tmem26 [7], Tbx1 [7], Cited1 [8] и Shox2 [9], TBX1 и TMEM26 [5]. Мембранные белки CD137 или TMEM26 могут быть использованы для выявления первичных предшественников бежевых жировых клеток [7].

В недавней работе было показано, что аминокислотный транспортер ASC-1, аминокислотый транспортер PAT2 и пуринергический рецептор P2RX5 являются маркерами для белых, бежевых и бурых адипоцитов, соответственно [10].

Эндотелиальные клетки

Эндотелиальные клетки образуют внтреннюю поверхность всех кровеносных сосудов, от крупных артерий и вен до капилляров. Большое количество эксклюзивных и неэксклюзивных эндотелиальных маркеров было идентифицировано.

Маркеры клеток Рисунок 1
Рисунок 1. Иммуногистохимия паховых лимфатических узлов EBOV-Заир-инфицированных макак. Окрашивание специфического маркера эндотелиальных клеток, фактора фон Виллебранда (зеленый), с использованием анти-фактор фон Виллебранда антител от Dako [207].

Эксклюзивные маркеры эндотелиальных клеток включают фактор фон Виллебранда [11], сосудистый эндотелиальный кадгерин (VE-кадгерин, CD144) [12], тромбомодулин (CD141) [13] и Патологическая Анатомия Лейден-эндотелий (PAL-E) [14]. Важно отметить, что PAL-E в качестве специфического маркера для сосудистого эндотелия используется для различения между кровеносным и лимфатическим эндотелием. К тому же, МЕКА-79 и антигенный рецептор Дэффи для хемокинов (DARC), как было показано, являются весьма специфичными для эндотелиальных клеток [11].

Неэксклюзивными эндотелиальными специфическими маркерами являются адгезивная молекула-1 тромбоцитов/эндотелиальных клеток (РЕСАМ-1, CD31), рецептор фактора роста сосудистого эндотелия (VEGFRs): VEGF R1 (FLT-1), VEGF-R2 (KDR / Flk-1) и VEGF R3, CD146 (MUC-18, S-эндо), UEA-1 (Ulex europaeus I agglutinin) и eNOS (эндотелиальная синтаза окиси азота).

Другие маркеры, которые являются важными для активации эндотелиальных клеток, включают CD146 (MUC-18, S-эндо), тромбомодулин (CD141), ICAM-1 (фактор межклеточной адгезии, CD54), Е-селектин (CD62E) [15] и апелин [16].

БелокUniprot accessionGene IDКоличество публикацийТри главных поставщика
Апелин Q9ULZ1 8862 1 Santa Cruz Biotechnology (1)
Адгезивная молекула-1 тромбоцитов и эндотелиальных клеток (PECAM-1, CD31) P16284 5175 109 BD Biosciences (44), Dako (33), Santa Cruz Biotechnology (9)
Фактор вон Виллебранда P04275 7450 25 Dako (18), Sigma-Aldrich (2), AbD Serotec (Bio-Rad) (1)
ICAM-1 (внутриклеточная адгезивная молекула, CD54) P05362 3383 19 BD Biosciences (4), Beckman Coulter (3), R and D Systems (2)
васкулярный эндотелиальный кадгерин (VE-кадгенрин, CD144) P33151 1003 16 BD Biosciences (4), Santa Cruz Biotechnology (3), EMD Millipore (3)
VEGF R2 (KDR/Flk-1) P35968 3791 15 Santa Cruz Biotechnology (6), Sigma-Aldrich (3), BD Biosciences (3)
UEA-1 (Ulex europaeus I агглутинин) P08174 1604 11 AbD Serotec (Bio-Rad) (3), Santa Cruz Biotechnology (2), Beckman Coulter (2)
VEGF R1 (Flt-1) P17948 2321 10 Santa Cruz Biotechnology (7), WILEX Inc. (1), EMD Millipore (1)
eNOS (эндотелиальная синтаза окиси азота) P29474 4846 10 BD Biosciences (5), Cell Signaling Technology (2), Santa Cruz Biotechnology (1)
VEGFR3 P35916 2324 8 Santa Cruz Biotechnology (3), Thermo Scientific (1), EMD Millipore (1)
тромбомодулин (CD141) P07204 7056 4 BD Biosciences (1), Dako (1)
CD146 (MUC-18, S-endo) P43121 4162 4Enzo Life Sciences (1), EMD Millipore (1), Santa Cruz Biotechnology (1)
E-селектин (CD62E) P16581 6401 2 R and D Systems (1), BD Biosciences (1)
Патологическая анатомия Лейден-эндотелия (PAL-E)
MECA-79
Дэффи антиген рецептор для хемокинов (DARC) Q16570 2532
Таблица 1. Основные маркеры эндотелиальных клеток и количество цитирований применения антител к ним в иммуногистохимии, иммуноцитохимии, проточной цитометрии и ИФА среди публикаций, проанализированных Labome.
Эпителиальные клетки

Эпителиальные клетки происходят из всех эмбриональных зародышевых листков (эктодермы, энтодермы и мезодермы). Клетки эпидермиса имеют эктодермальное происхождение. Преобладающие эпидермальные клетки представляют собой кератиноциты, которые дифференциируют из эпидермальных стволовых клеток. Есть также большое количество субтип-специфических эпителиальных маркеров.

Кератины (К) являются кератин-содержащими белками, детектируемыми в цитоплазме эпителиальных клеток [17, 18]. Существуют кислые тип I и основные тип II кератиноциты. Кератины 1-3 экспрессируются плоскоклеточными эпителиальными клетками. Экспрессия K5 и K6 является специфической для мезотелиальных клеток и K7 для протоков и железистых эпителиальных клеток. K8 экспрессируется в эпителиальных клетках желудочно-кишечного тракта (в том числе желудка, толстой кишки, тонкого кишечника, желчного пузыря, печени, поджелудочной железы) и молочных железах [19]. Эпителиальные клетки кожи, кератиноциты, экспрессируют следующие специфические маркеры: кератины 1, 5, 10, 14, 15 и 16. К10 экспрессируется в супрабазальном слое плоскоклеточного эпителия. K18 служит маркером пролиферирующих злокачественных эпителиальных клеток [20].

БелокUniprot accessionID генаЧисло публикацийТри главных поставщика
E-кадгерин P12830 999 66 BD Biosciences (24), Thermo Scientific (14), Santa Cruz Biotechnology (7)
кератин 1 P04264 3848 26Dako (6), Sigma-Aldrich (4), BD Biosciences (3)
кератин 7 P08729 3855 26 Dako (20), Santa Cruz Biotechnology (1), BD Biosciences (1)
Эпителиальный Мембранный Антиген (EMA, CD227, MUC-1) P15941 4582 21 Dako (9), Leica Biosystems (3), Thermo Scientific (2)
кератин 18 P05783 3875 19 Sigma-Aldrich (6), Thermo Scientific (4), Leica Biosystems (2)
сурвинин O15392 332 18 Novus Biologicals (7), Abcam (2), Santa Cruz Biotechnology (2)
ICAM-1 P05362 3383 19 BD Biosciences (4), Beckman Coulter (3), R and D Systems (2)
кератин 14 P02533 3861 16 BioLegend (5), Leica Biosystems (4), EMD Millipore (2)
кератин 5 P13647 3852 15 Dako (5), BioLegend (2), Leica Biosystems (2)
кератин 8 P05787 3856 12 Developmental Studies Hybridoma Bank (3), BD Biosciences (3), Dako (2)
VLA-6 P23229 3655 13 EMD Millipore (5), BD Biosciences (3), Beckman Coulter (2)
адгезивные молекулы LFA-1 P20701 3683 9 BD Biosciences (3), ATCC (2), eBioscience (1)
адгезивные молекулы LFA-2 P06729 914 9 BD Biosciences (4), Leica Biosystems (2), Stemcell Technologies (2)
кератин 10 P13645 3858 8 Dako (3), BioLegend (2), Novus Biologicals (1)
специфический для простаты антиген (PSA) P07288 354 8 Dako (4), Beckman Coulter (1), Abcam (1)
VLA-5 P08648 3678 7 EMD Millipore (4), Santa Cruz Biotechnology (2), Beckman Coulter (1)
Fc часть IgG (FcR) P12318 2212 6 BD Biosciences (2), AbD Serotec (Bio-Rad) (1), Stemcell Technologies (1)
VLA-3 P26006 3675 6 EMD Millipore (3), Beckman Coulter (1), Dako (1)
сурфактант белок A Q8IWL2 653509 4 EMD Millipore (2), Dako (2)
VLA-2 P17301 3673 5 BD Biosciences (2), Beckman Coulter (1), EMD Millipore (1)
VLA-4 P13612 3676 3 Beckman Coulter (1), EMD Millipore (1), eBioscience (1)
кератин 3 P12035 3850 2 Santa Cruz Biotechnology (1), BD Biosciences (1)
кератин 16 P08779 3868 2Leica Biosystems (2)
эпителиальный натриевый канал α P37088 6337 2Abcam (1), EMD Millipore (1)
сурфактант белок C P11686 6440 2 EMD Millipore (2)
keratin 15 P19012 3866 1 BioLegend (1)
эпителиальный натриевый канал δ P51172 6339 1GE Healthcare Life Biosciences (1)
сурфактант белок B P07988 6439
интегриновые молекулы: VLA-1 P56199 3672 1Beckman Coulter (1)
кератин 2 P35908 3849
кератин 6 P02538 3853
Эпителиальный натриевый канал β P51168 6338 1Individual Researcher (1)
эпителиальный натриевый канал γ P51170 6340 1Individual Researcher (1)
сурфактант белок D P35247 6441
Таблица 2. Основные маркеры эпителиальных клеток и количество цитирований применения к ним антител в иммуногистохимии, иммуноцитохимии, проточной цитометрии и ИФА среди публикаций, проанализированных Labome.

Другими маркерами эпителиальных клеток являются Е-кадгерин, эпителиальный мембранный антиген (EMA, CD227, MUC-1) (экспрессируемый большинством секреторных эпителиальных клеток), эпителиальные натриевые каналы a, b, γ, δ, специфический антиген простаты (PSA) (экспресируемый эпителиальными клетками простаты), сурфактант белок A-D (экспрессируемый легочным эпителием), сурвивин (клетки эпителиальной карциномы).

Кроме того, они экспрессируют рецепторы для Fc-части IgG (FcR), молекулы интегрина VLA-1, 2, 3, 4, 5, 6, молекулы адгезии LFA-1, LFA-2, ICAM-1 [1548035 ). Клетки, образующие слизистую оболочку желудочно-кишечного тракта, развиваются из энтодермы. Оболочки полостей тела развиваются из мезодермы.

Дендритные клетки

Дендритные клетки (DC) играют ключевую роль в адаптивном иммунитете, индуцируя антиген-специфический иммунитет. Что касается функций и локализации, дендритные клетки могут быть разделены на три популяции: классические, плазмоцитоидные и дермальные (находящиеся в коже) дентритные клетки [21].

Маркеры клеток Рисунок 2
Рисунок 2. Экспрессия маркера CD11c дендритными клетками в коже человека, детектированная с использованием анти-CD11c антител (BD Pharmingen) [208].

Классические дентритные клетки находятся в лимфатических узлах, селезенке и тимусе. У мышей классические дентритные клетки могут быть разделены на CD8 + (с фенотипов CD8+CD205+SIRPa-CD11b- в селезенке и CD11chiMHC II+CD8+CD205+ в лимфатических узлах) и CD8- дендритные клетки [22]. Эти клетки активируют Т-клетки в направлении Th1 и Th2 дифференциации, соответственно.

Плазмоцитоидные дентритные клетки принадлежат ко второй популяции дентритных клеток, которые находятся в лимфатических узлах, селезенке, тимусе и костном мозге. Плазмоцитоидные дентритные клетки человека созревают в костном мозге и играют определенную роль в противовирусном иммунитете, секретируя противовирусные и провоспалительные цитокины, включая интерферон, TNF-альфа, IL-6 и IL-12. Эти клетки состоят из двух популяций: CD2high и CD2low плазмоцитоидные дентритные клетки. Как плазмоцитоидные дентритные клетки человека, так и мыши экспрессируют следующие маркеры: B220/CD45R, CD11c [23], TLR7 и TLR9, IRF7, IRF8 [24] и BDCA2 [25].

Маркеры клеток Рисунок 3
Рисунок 3. Экспрессия маркера CD1a дендритными клетками в коже человека с использованием анти-CD1a антител (Dako) [208].

Третья популяция дентритных клеток находится в коже и имеет миелоидное происхождение. Есть две различные популяции дентритных клеток кожи: эпидермальные клетки Лангерганса (LCS) и дермальные дендритные клетки. Клетки Лангерганса идентифицируются наличием лангерин- содержащих Birbeck гранул и экспрессируют следующие маркеры: CD1a, CD45. Кроме того, среди кожных дендритных клеток были идентифицированы две субпопуляции: CD103+CD11blowLangerin+ и CD103-CD11bhiLangerin- дендритные клетки [26]. Дермальные дендритные клетки также экспрессируют CD14. Зрелые дендритные клетки экспрессируют CD1a, CD1b и CD1c молекулы, которые презентируют липидные и гликолипидные антигены CD1/ограниченный Т-клеткам [27].

Были идентифицированы несколько факторов, регулирующих дифференцировку дендритных клеток. Человеческие CD14+ моноциты дифференцируются в дендритные клетки, когда культивируются с GMC-SF + IL4 [28]. Кроме того, CD34+ клетки человека могут дифференцироваться в дендритные клетки при культивировании с GMC-SF + TNFα [29]. Клетки костного мозга мышей, культивируемые с GMCSF + TNF + фактор стволовых клеток (SCF], могут дифференцировать в дендритные клетки [30].

Существуют и другие маркеры дендритных клеток, которые имеют разную степень специфичности. CD83 является специфическим маркером зрелых дендритных клеток [31]. CD21 и кластерин являются маркерами фолликулярных дендритных клеток [32, 33]. Кроме того, дендритные клетки экспрессируют: ADAM19 [34], CD86 [35], DC-LAMP (CD208] [36, 37], DC-SIGN (CD209) [38], DEC-205 [39], CLIP-170/рестин [40], NLDC-145 [41]. MADDAM (металлопротеаза и дисинтегрин дендритный антиген маркер) является маркером диференцироки дендритных клеток [42].

БелокUniprot accessionGene IDЧисло публикацийГлавных три поставщика
B220/CD45R P08575 5788 114 BD Biosciences (58), Dako (21), Beckman Coulter (9)
CD45 P08575 5788 114 BD Biosciences (58), Dako (21), Beckman Coulter (9)
CD14 P08571 929 70 BD Biosciences (34), Beckman Coulter (10), Thermo Scientific (5)
TNFα P01375 7124 51 BD Biosciences (17), R and D Systems (11), Thermo Scientific (7)
IL-6 P05231 3569 34 R and D Systems (14), BD Biosciences (9), Thermo Scientific (4)
CD11c P20702 3687 22 BD Biosciences (15), AbD Serotec (Bio-Rad) (2), BioLegend (2)
CD86 P42081 942 21 BD Biosciences (11), Beckman Coulter (2), BioLegend (2)
CD83 Q01151 9308 19 BD Biosciences (9), Beckman Coulter (5), BioLegend (1)
CD1a P06126 909 15 Beckman Coulter (5), BD Biosciences (4), Dako (2)
CD21 P20023 1380 12 BD Biosciences (7), Dako (5)
IL-12 P29459 3592 6BD Biosciences (3), R and D Systems (2), AbD Serotec (Bio-Rad) (1)
TLR9 Q9NR96 54106 4 Santa Cruz Biotechnology (1), eBioscience (1), Novus Biologicals (1)
TLR7 Q9NYK1 51284 3 Santa Cruz Biotechnology (1), Novus Biologicals (1), Enzo Life Sciences (1)
CD1c P29017 911 2Miltenyi Biotec (1), BD Biosciences (1)
DC-SIGN (CD209) Q9NNX6 30835 3 BD Biosciences (2), R and D Systems (1)
IRF7 Q92985 3665 1 Santa Cruz Biotechnology (1)
BDCA2 Q8WTT0 170482 1Cocalico Biologicals (1)
clusterin P10909 1191 2 Santa Cruz Biotechnology (1), Individual Researcher (1)
DC-LAMP (CD208] Q9UQV4 27074 1 Beckman Coulter (1)
CLIP-170/рестин P30622 6249 1
IRF8 Q02556 3394
CD1b P29016 910
ADAM19 Q9H013 8728
DEC-205 O60449 4065 1 Thermo Scientific (1)
NLDC-145
MADDAM Q9H013 8728
Таблица 3. Основные маркеры дендритных клеток и количество цитирований применения к ним антител в иммуногистохимии, иммуноцитохимии, проточной цитометрии и ИФА среди публикаций, проанализированных Labome.
Глиальные клетки

Глиальными клетками являются клетки, расположенные в нервной системе, которые обеспечивают защиту и питание нейронам, регулируют миграцию нейронов в раннем развитии, связи между нейронами и высвобождение нейротрансмиттеров. К глиальным линиям клеток относятся микроглия и макроглия. Клетки микроглии человекадифференцируются в костном мозге из гемопоэтических стволовых клеток и экспрессируют МНС класса I, класса II главный комплекс гистосовместимости, CD45, CD68 и S22 [43].

Маркеры клеток Рисунок 4
Рисунок 4. Экспрессия S100 шванновскими клетками в продольных участках седалищного нерва, детектированная с использованием анти-S100 антител (Dako) [209].

Макроглия состоит из астроцитов, олигодендроцитов, эпендимных клеток, радиальной глии, шванновских клеток, клеток-сателлитов и кишечных глиальных клеток. Астроциты подразделяются на астроциты 1-го типа (Ran2+, GFAP+, FGFR3+, A2B5-) и астроциты 2-го типа (A2B5+, GFAP+, FGFR3-, Ran 2-). Существуют две основные группы шванновских клеток: миелинизирующие (специфические маркеры: белок S-100, миелина белок ноль (P-Zero) и основной белок миелина (MBP)) и немиелинизирующие (специфические маркеры: S-100 и глиальный фибриллярный кислый белок (GFAP)). Предшественники олигодендроцитов экспрессируют рецептор тромбоцитарного фактора роста (PDGF) [44]. Эпендимные клетки экспрессируют S-100, виментин, GFAP, BLBP, 3A7 и 3CB2 [45]. Шванновские клетки являются основными глиальными клетками периферической нервной системы. Специфическими маркерами для идентификации шванновских клеток являются S-100, основной белок миелина и миелиновый белков ноль. Сателлитные клетки обеспечивают поддержку нейронам в периферической нервной системе и экспрессируют CD45 и маркеры миелоидного происхождения CD14, CD68 и CD11b [46]. Специфические маркеры для кишечных глиальных клеток: S-100 протеин, белок нейрофиламентов и белковый продукт гена 9.5 (PGP).

БелокUniprot accession ID генаЧисло публикацийТри главных поставщика
CD45 P08575 5788 114 BD Biosciences (58), Dako (21), Beckman Coulter (9)
CD68 P34810 968 82 Dako (64), AbD Serotec (Bio-Rad) (4), Santa Cruz Biotechnology (3)
GFAP P14136 2670 80 Dako (35), Sigma-Aldrich (19), EMD Millipore (12)
CD14 P08571 929 70 BD Biosciences (34), Beckman Coulter (10), Thermo Scientific (5)
виментин P08670 7431 61 Dako (23), Sigma-Aldrich (13), Thermo Scientific (4)
CD11b P11215 3684 36 BD Biosciences (16), Dako (5), Beckman Coulter (3)
белок S-100 P23297 6271 19Dako (12), Sigma-Aldrich (2), BioLegend (1)
Миелиновый основной белок (MBP) P02686 4155 15 EMD Millipore (7), Dako (4), BioLegend (1)
рецептор фактора роста тромбоцитов (PDGFR) P09619 5159 15 Santa Cruz Biotechnology (4), Cell Signaling Technology (4), BD Biosciences (2)
белок нейрофиламента P07196 4747 15 EMD Millipore (6), Santa Cruz Biotechnology (2), Sigma-Aldrich (2)
MHC класс I P30443 3105 7 BD Biosciences (3), Santa Cruz Biotechnology (1), ATCC (1)
белковый продукт гена 9.5 (PGP) P09936 7345 5 EMD Millipore (2), AbD Serotec (Bio-Rad) (1), Accurate Chemical (1)
FGFR3 P22607 2261 2 Santa Cruz Biotechnology (2)
BLBP O15540 2173 2 R and D Systems (1), EMD Millipore (1)
Ran2
A2B5
MHC класс II P01906 3118
S22 P82650 56945
Миелиновый белок ноль (P-Zero) P25189 4359 1Individual Researcher (1)
3A7 P47888 8392
3CB2
Таблица 4. Основные маркеры глиальных клеток и количество цитирований применения к ним антител в иммуногистохимии, иммуноцитохимии, проточной цитометрии и ИФА среди публикаций, проанализированных Labome.
Клетки костного мозга

Костный мозг содержит гемопоэтические стволовые клетки (HSC), которые дают три основные класса клеток крови: лейкоциты, эритроциты и тромбоциты. Основной фенотип гемопоэтических стволовых клеток человека: CD34+, CD38low/-, CD59+, Thy1+, c-Kit+, Lin-. Гемопоэтические стволовые клетки мыши можно определить как: CD34low/-, CD38+, Thy1+/low, SCA-1+, c-Kit+, Lin-. Другими маркерами, экспрессируемыми гемопоэтическими стволовыми клетками, являются CD90, CD93, CD105, CD110, Ly-6A/E (Sca-1), CD111, CD135 (Flk-2), CD150 (SLAM), CD184 (CXCR4), CD202b, CD243 (MDR-1), CD271 (NFGR), CD309 (VEGFR2) и CD338 [47].

Маркеры клеток Рисунок 5
Рисунок 5. Экспрессия CD34 изолированными макрофагами из костного мозга с использованием анти-CD34 антител от Santa Cruz [210].

Основные процессы дифференциации в костном мозге включают миелопоэз, эритропоэз и развитие линии мегакариоцитов. В процессе миелопоэза генерируются следующие типы клеток: гранулоциты, моноциты и тучные клетки. Существуют три различных типа гранулоцитов, генерируемых в костном мозге: эозинофилы, базофилы и нейтрофилы. Эозинофилы дифференцируются в костном мозге в ответ на IL-3, IL-5 и GM-CSF [48-50]. Как мышиные, так и нейтрофилы человека экспрессируют следующие маркеры: FcεRI, CD123, CD49b (DX-5), CD69, Thy-1.2, 2B4, CD11bdull [51], Ly-6G [52]. Специфический поверхностный маркер моноцитов CD14 (CD14+ клетки). Маркеры, постоянно экспрессируемые тучными клетками костного мозга: CD9, CD29, CD33, CD43, CD44, CD49d, CD49e, CD51, CD71, CD117 и Fc(эпсилон)RI [53].

БелокUniprot accession ID генаNumГлавные три поставщика
CD34 P28906 947 72 BD Biosciences (25), Dako (15), Beckman Coulter (8)
CD14 P08571 929 70 BD Biosciences (34), Beckman Coulter (10), Thermo Scientific (5)
Ly-6A/E (Sca-1) P42574 836 56 Cell Signaling Technology (20), BD Biosciences (12), R and D Systems (5)
CD44 P16070 960 41 BD Biosciences (12), Thermo Scientific (5), Beckman Coulter (4)
CD71 P02786 7037 39 Thermo Scientific (14), BD Biosciences (6), Roche Applied Science (6)
CD11b P11215 3684 36 BD Biosciences (16), Dako (5), Beckman Coulter (3)
c-Kit P10721 3815 33 BD Biosciences (9), Dako (7), Santa Cruz Biotechnology (6)
CD117 P10721 3815 33 BD Biosciences (9), Dako (7), Santa Cruz Biotechnology (6)
CD29 P05556 3688 33 EMD Millipore (8), BD Biosciences (5), Santa Cruz Biotechnology (3)
CD184 (CXCR4) P61073 7852 28 R and D Systems (12), BD Biosciences (7), EMD Millipore (2)
CD38 P28907 952 17 BD Biosciences (12), Thermo Scientific (2), Miltenyi Biotec (1)
Thy1 P04216 7070 16 BD Biosciences (9), EMD Millipore (2), Beckman Coulter (2)
CD90 P04216 7070 16 BD Biosciences (9), EMD Millipore (2), Beckman Coulter (2)
Thy-1.2 P04216 7070 16 BD Biosciences (9), EMD Millipore (2), Beckman Coulter (2)
CD309 (VEGFR2) P35968 3791 15 Santa Cruz Biotechnology (6), Sigma-Aldrich (3), BD Biosciences (3)
CD69 Q07108 969 14 BD Biosciences (13), Dako (1)
CD271 (NFGR) P08138 4804 13 EMD Millipore (3), Promega (3), Miltenyi Biotec (1)
CD105 P17813 2022 11 BD Biosciences (5), Dako (2), R and D Systems (1)
CD59 P13987 966 10 Beckman Coulter (2), AbD Serotec (Bio-Rad) (1), Thermo Scientific (1)
CD123 P26951 3563 10 BD Biosciences (6), eBioscience (3), Miltenyi Biotec (1)
CD33 P20138 945 8 BD Biosciences (5), Beckman Coulter (2), Dako (1)
CD43 P16150 6693 7 BD Biosciences (4), Santa Cruz Biotechnology (1), Cosmo Bio (1)
CD49e P08648 3678 7 EMD Millipore (4), Santa Cruz Biotechnology (2), Beckman Coulter (1)
CD202b Q02763 7010 6 Santa Cruz Biotechnology (3), EMD Millipore (2), Cell Signaling Technology (1)
IL-5 P05113 3567 7 BD Biosciences (3), Miltenyi Biotec (1), Thermo Scientific (1)
CD243 (MDR-1) P08183 5243 5 EMD Millipore (2), Santa Cruz Biotechnology (1), Sigma-Aldrich (1)
CD338 Q9UNQ0 9429 5 EMD Millipore (1), Enzo Life Sciences (1), eBioscience (1)
FcεRI P12319 2205 5 EMD Millipore (1), eBioscience (1), Sigma-Aldrich (1)
CD49b (DX-5) P17301 3673 5 BD Biosciences (2), Beckman Coulter (1), EMD Millipore (1)
CD51 P06756 3685 7 EMD Millipore (6)
GM-CSF P15509 1438 4 BD Biosciences (2), Beckman Coulter (1), Thermo Scientific (1)
CD9 P21926 928 4 Sigma-Aldrich (1), BD Biosciences (1), Cosmo Bio (1)
CD150 (SLAM) Q13291 6504 3 eBioscience (1), BioLegend (1), BD Biosciences (1)
CD49d P13612 3676 3 Beckman Coulter (1), EMD Millipore (1), eBioscience (1)
Lin Q9H9Z2 79727 1 Proteintech Group (1)
CD93 Q9NPY3 22918 1 eBioscience (1)
CD110 P40238 4352 1 R and D Systems (1)
IL-3 P08700 3562 1 Thermo Scientific (1)
2B4 Q9BZW8 51744 1 eBioscience (1)
CD111 Q15223 5818 1Individual Researcher (1)
CD135 (Flk-2) P36888 2322
Ly-6G
Таблица 5. Основные маркеры клеток костного мозга и количество цитирований к ним антител в иммуногистохимии, иммуноцитохимии, проточной цитометрии и ИФА среди публикаций, проанализированных Labome.
Натуральные киллеры

Природные клетки-киллеры (NK) играют важную роль в иммунной реакции против злокачественных и инфицированных клеток. В процессе клонального развития NK клетки человека проходят через пять основных этапов дифференциации. В течение этих пяти этапов NK-клетки экспрессируют различные наборы маркеров: 1) CD34 + CD45RA + CD117- CD161- CD94-; 2) CD34 + CD45RA + CD117 + CD161 +/- CD94-; 3) CD34- CD117 + CD161 + NKp46- CD94-; 4) CD34- CD117 +/- NKp46 + CD94 + CD16- CD56bright; 5) CD34- CD117- NKp46 + CD94 +/- CD16 + CD56dim [54]. Существуют две основные популяции клеток NK крови человека, которые определяются на основе интенсивности экспрессии CD56 [55, 56] и рецептора Fc с низким сродством CD16. Большая популяция клеток CD56dim NK (∼ 90%) экспрессирует высокие уровни CD16, в то время как меньшая популяция клеток CD56bright NK-клетки экспрессирует мало CD16.

Маркеры клеток Рисунок 6
Рисунок 6. Иммунофлуоресценция CD56 для идентификации натуральных клеток-киллеров (NK) в портальных трактах печени человека с молекулярной сигнатурой воспаления с использованием антител к CD56 (BD Biosciences) [211].

В отличие от клеток NK человека, NK-клетки мыши могут отличаться друг от друга экспрессией CD27 и CD11b маркеров. Эти популяции включают в себя незрелые клетки CD11b− NK, клетки CD27 + NK и зрелые (терминальные) CD27−CD11b + NK-клетки. NK-клетки могут быть активированы с помощью нескольких интерлейкинов: IL-12, IL-2, IL-15, IL-18. Кроме того, NK-клетки экспрессируют рецепторы для CXC, CC и C хемокинов, которые имеют важное значение для регуляции функций NK [57]. Кроме того, NK-клетки экспрессируют рецепторы, распознающие молекулы МНС класса I (человек KIRs, грызуны Ly49 и CD94/NKG2), NKp46, FcgRII и не-MHC-связывающие рецепторы NK (НКР-P1 (CD161)) [58], натуральные цитотоксические рецепторы (NCR) и 2В4) [59], NKG2A и NKp80 [60], CD107a - функциональный маркер активности NK клеток [61], CD69 - маркер активации клеток NK [58], CD335/NKp46 [62], BAT [63], CD57/HNK1 [64], NKH1 (N901) [65], DPIV (дипептидилпептидаза IV) - поверхностный маркер клеток NK [66] H25 [67].

ProteinUniprot accessionID генаNumТри главных поставщика
CD45RA P08575 5788 114 BD Biosciences (58), Dako (21), Beckman Coulter (9)
CD34 P28906 947 72 BD Biosciences (25), Dako (15), Beckman Coulter (8)
CD56 P13591 4684 51 BD Biosciences (20), Leica Biosystems (4), Dako (4)
CD11b P11215 3684 36 BD Biosciences (16), Dako (5), Beckman Coulter (3)
CD107a P11279 3916 35 BD Biosciences (13), Developmental Studies Hybridoma Bank (9), Santa Cruz Biotechnology (6)
CD16 P08637 2214 31 BD Biosciences (19), Beckman Coulter (2), ATCC (2)
CD117 P10721 3815 33 BD Biosciences (9), Dako (7), Santa Cruz Biotechnology (6)
CD69 Q07108 969 14 BD Biosciences (13), Dako (1)
IL-2 P60568 3558 16 BD Biosciences (10), R and D Systems (3), Thermo Scientific (2)
CD27 P26842 939 11 BD Biosciences (7), Beckman Coulter (2), Thermo Scientific (1)
CD57/HNK1 Q9P2W7 27087 8 BD Biosciences (4), Leica Biosystems (2), EMD Millipore (1)
IL-12 P29459 3592 6BD Biosciences (3), R and D Systems (2), AbD Serotec (Bio-Rad) (1)
FcgRII P12318 2212 6 BD Biosciences (2), AbD Serotec (Bio-Rad) (1), Stemcell Technologies (1)
CD161 Q12918 3820 4 BD Biosciences (4)
IL-15 P40933 3600 4 R and D Systems (3), Santa Cruz Biotechnology (1)
CXC хемокиновый рецептор P25024 3577 4 R and D Systems (2), Santa Cruz Biotechnology (1), BD Biosciences (1)
DPIV (дипептилпептидаза IV) P27487 1803 6 R and D Systems (1), eBioscience (1), Enzo Life Sciences (1)
CD94 Q13241 3824 3 BD Biosciences (3)
IL-18 Q14116 3606 3 Thermo Scientific (1), MBL International (1)
CC рецептор P32246 1230 3MBL International (1), Genzyme (1), Capralogics (1)
CD94/NKG2 Q13241 3824 3 BD Biosciences (3)
NKp46 O76036 9437 2 R and D Systems (1), Beckman Coulter (1)
натуральный цитотоксический рецептор (NCR) O76036 9437 2 R and D Systems (1), Beckman Coulter (1)
2B4 Q9BZW8 51744 1 eBioscience (1)
NKG2A P26715 3821 1 R and D Systems (1)
C рецептор
KIR P43629 3811
Ly49
NKp80 Q9NZS2 51348
BAT Q14032 570
NKH1 (N901)
H25
Таблица 6. Основные маркеры натуральных клеток-киллеров и количество цитирований применения к ним антител в иммуногистохимии, иммуноцитохимии, проточной цитометрии и ИФА среди публикаций, проанализированных Labome.
Другие типы клеток
Th1 клетки

Th1 клетки являются подтипом CD4+ Т-клеток, которые играют важную роль в адаптивном иммунном ответе, направленном против внутриклеточных бактерий и вирусов. Th1 клетки продуцируют IL-1, IL-10, IFN-гамма, TNF-альфа/бета. Основные маркеры Th1 клеток включают CD4, CD26, CD94, CD119, CD183, CD195, CCR1, IL-18R, LT-Вг, Tim-3 [68]. Кроме того, эти клетки экспрессируют хемокины и рецепторы хемокинов: CCR5 и CXCR3 [69, 70].

Маркеры клеток Рисунок 7
Рисунок 7. Иммуногистохимическая детекция CD4+ Т-клеток легких RAG2-/- B6 мыши, в котрую ввели 30.000 CD4+ В6 Т-клеток с использованием анти-CD34 антител от BD Biosciences [212].
Th2 клетки

Th2 клетки являются подтипом CD4+ Т-клеток, которые играют важную роль в гуморальном иммунном ответе и играют важную роль в иммунной реакции на внеклеточные патогены. Th2 клетки секретируют несколько цитокинов, включая IL-4, IL-5, IL-9, IL-13. Маркерами клеток Th2 являются CD4, CD184 (CXCR4), CD193 (CCR3), CD194 (CCR4), CD197 (CCR7), CD278 (ICOS), IL-1R, IFNгаммаR [68]. Кроме того, эти клетки экспрессируют хемокины и рецепторы хемокинов: CCR3, CCR4, CCR7, CXCR4 и CXCR8 [69, 71].

Jurkat клетки

Jurkat клетки представляют собой CD4+ T клетки лейкемии. Эти клетки экспрессируют специфические маркер T клеток, вклюая CD3, CD4, CD45 [72] и продуцируют интерлейкин-2 (IL-2).Также Jurkat клетки экспресируют хемокиновые рецепторы CCR1-10 и CXCR4.

Тучные клетки

Тучные клетки являются гранулированными клеткамии гематопоэтического происхождения и обнаруживаются в большинстве тканей. Тучные клетки содержат большое количество гранул, богатых гистамином и гепарином, и играют важную роль в механизмах аллергии и анафилаксии. Специфические маркеры тучных клеток включают высоко аффинный рецептор IgE, CD25, CD117 (c-Kit), CD23, CD203c [73].

Ганглиозные клетки сетчатки

Ганглиозные клетки сетчатки являются нейронами в сетчатке. Ганглиозные клетки получают информацию о визуальном мире и передают ее через зрительный нерв в зрительные центры мозга. Специфические маркеры ганглиозных клеток сетчатки включают NGF, NSCL2 [74], PKC, Hu и Brn3b [75].

Пирамидальные клетки

Пирамидальные клетки представляют собой нейроны, расположенные в нескольких различных областях центральной нервной системы, таких как коре головного мозга, гиппокампе и миндалевидном теле. Они, как считается, играют важную роль в когнитивных функциях. Специфические маркеры пирамидальных клеток включают CaMK (кальций/кальмодулин-зависимая протеинкиназа II, CaMKII) [76], нейрогранин/RC3 [77, 78], SMI-32 [79-81], MATH-2 [82], SCIP [82, 83], Emx1 [84].

Половые клетки

Половые клетки представляют собой специфические типы клеток, участвующие в репродукции. Они включают в себя гаметы (сперму и яйца) и гоноциты, регулирующие производство гамет. Специфические маркеры зародышевых клеток включают 4C9 [85], GCNA1 (ядерный антиген половых клеток 1, GCNA-1) [86, 87], DAZ-подобный 1(DAZL1) [88], VASA [89], ZAR1 (zygotic arrest 1) [86], TEX101 [90]. А также RBM (RNA-связывающий мотив) [91] и тесмин [92].

Шванновские клетки

Глиальные клетки расположены в нервной системе и обеспечивают защиту и питание для нейронов, регулируют миграцию нейронов в раннем развитии, связи между нейронами и высвобождение нейротрансмиттеров. Шванновские клетки являются основными глиальными клетками периферической нервной системы. Шванновские клетки оборачиваются вокруг аксонов. Кроме того, шванновские клетки играют важную роль в удалении дебриса и росте нервных аксонов. Специфические маркеры для идентификации шванновских клеток включают S-100 [93], основной белок миелина (MBP) [94] и миелина белок ноль (MPZ).

Клетки Пуркинье

Клетки Пуркинье являются подтипом нервных клеток, расположенных в коре мозжечка. Специфическими маркерами клеток Пуркинье являются цГМФ-зависимая протеинкиназа [95], гуанозин 3',5'-фосфат-зависимая протеинкиназа [96], зебрин I и зебрин II - специфичные маркеры клеток Пуркинье [97-99], Car8 [100], HFB-16 (KIAA0864 белок) [101], инозитол 1, 4, 5-трифосфат-рецептор (IP3R ) [102-104].

Клетки гранулезы

Зернистые клетки образуют барьер вокруг овариальных фолликулов ооцитов. По мере того как фолликулы созревают, зернистые клетки размножаются, образуя много слоев вокруг ооцита. Зернистые клетки вырабатывают эстрадиол до овуляции и секретируют прогестерон после овуляции. Основные маркеры гранулезных клеток AMH (анти-муллериановый гормон) [105], регуляторный белок фолликул (FRP) [106], ингибин [107, 108], MCAM (молекулы клеточной адгезии меланомы, CD146) [109], фибронектин [110].

Большие лютеиновые клетки

Большие лютеиновые клетки расположены в желтом теле и производят прогестерон и окситоцин. Они развиваются из клеток гранулезы. Маркеры больших лютеиновых клеток включают CYP11A1 [111], рецептор лютеинизирующего гормона [112], фосфорилированный Akt [113].

Клетки Сертоли

Клетки Сертоли играют важную роль в механизме сперматогенеза. Кроме того, клетки Сертоли контролируют транспорт гормонов в семенных канальцах. Специфическими маркерами клеток Сертоли являются ABP (андроген-связывающий белок) [114], Dhh (Desert hedgehog) [115], GATA-1 [116].

БелокДеталиUniprot accessionID генаКоличество публикацийГлавных три поставщика
Th1 клетки
CD4клеточная поверхность [68] P01730 920 109 BD Biosciences (64), Dako (8), eBioscience (7)
TNFальфасекреторный P01375 7124 51 BD Biosciences (17), R and D Systems (11), Thermo Scientific (7) 51
IFN-гаммасекреторный P01579 3458 52 BD Biosciences (27), Thermo Scientific (9), R and D Systems (3)
CD195клеточная поверхность [68] P51681 1234 28 BD Biosciences (16), R and D Systems (8), BioLegend (1)
CCR5хемокин [69, 70] P51681 1234 28 BD Biosciences (16), R and D Systems (8), BioLegend (1)
CXCR3хемокиновый рецептор [69, 70] P49682 2833 9 R and D Systems (5), BD Biosciences (4)
CD183клеточная поверхность [68] P49682 2833 9 R and D Systems (5), BD Biosciences (4)
CD119клеточная поверхность [68] P15260 3459 4 AbD Serotec (Bio-Rad) (1), Santa Cruz Biotechnology (1), Thermo Scientific (1)
CD26клеточная поверхность [68] P27487 1803 6 R and D Systems (1), eBioscience (1), Enzo Life Sciences (1)
CD94клеточная поверхность [68] Q13241 3824 3 BD Biosciences (3)
CCR1клеточная поверхность [68] P32246 1230 3MBL International (1), Genzyme (1), Capralogics (1)
IL-18Rклеточная поверхность [68] Q13478 8809 2 R and D Systems (1), BD Biosciences (1)
LT-betaRклеточная поверхность [68] P36941 4055 2 Santa Cruz Biotechnology (1), Individual Researcher (1)
Tim-3клеточная поверхность [68] Q8TDQ0 84868
TNFбетасекреторный P01374 4049
Tbetтранскрипционный фактор [117] Q9UL17 30009 1 BD Biosciences (1)
Th2 клетки
CD4 клеточная поверхность [68] P01730 920 109 BD Biosciences (64), Dako (8), eBioscience (7)
CD184/CXCR4 хемокин, хемокиновый рецептор [68, 69, 71] P61073 7852 28 R and D Systems (12), BD Biosciences (7), EMD Millipore (2)
IL-10 секреторный P22301 3586 21 BD Biosciences (13), R and D Systems (5), Miltenyi Biotec (1)
IL-4 секреторный P05112 3565 18 BD Biosciences (11), Thermo Scientific (2), eBioscience (1)
IL-13 секреторный P35225 3596 9 BD Biosciences (4), R and D Systems (2), Thermo Scientific (1)
CD197/CCR7 хемокин, хемокиновый рецептор [68, 69, 71] P32248 1236 8 BD Biosciences (4), R and D Systems (2), eBioscience (1)
IL-5 секреторный P05113 3567 7 BD Biosciences (3), Miltenyi Biotec (1), Thermo Scientific (1)
CD193/CCR3 хемокин, хемокиновый рецептор [68, 69, 71] P51677 1232 6 Santa Cruz Biotechnology (2), R and D Systems (2), National Institutes of Health AIDS Research and Reference Reagent Program (1)
IFNalphaR/TNFR-I клеточная поверхность [68] P19438 7132 5 R and D Systems (3), Thermo Scientific (1), Genzyme (1)
CD194/CCR4 хемокин, хемокиновый рецептор [68, 69, 71] P51679 1233 3 BD Biosciences (2), Santa Cruz Biotechnology (1)
CD278/ICOS клеточная поверхность [68] Q9Y6W8 29851 2 R and D Systems (1), ATCC (1)
IL-1R клеточная поверхность [68] P14778 3554 2 R and D Systems (2)
GATA-3 транскрипционный фактор [117] P23771 2625 3 Santa Cruz Biotechnology (2), BD Biosciences (1)
CCR8 хемокин, хемокиновый рецептор [69, 71] P51685 1237 2 Enzo Life Sciences (1)
IL-9 секреторный P15248 3578
Jurkat клетки
CD45 клеточная поверхность [72] P08575 5788 114 BD Biosciences (58), Dako (21), Beckman Coulter (9)
IL-2 секреторный P60568 3558 16 BD Biosciences (10), R and D Systems (3), Thermo Scientific (2)
CD3/CD3E клеточная поверхность [72] P07766 916 13 BD Biosciences (9), Thermo Scientific (1), Sigma-Aldrich (1)
Тучные клетки
CD25 клеточная поверхность [73] P01589 3559 43 BD Biosciences (24), Santa Cruz Biotechnology (4), Thermo Scientific (4)
CD117/c-Kitклеточная поверхность [73] P10721 3815 33 BD Biosciences (9), Dako (7), Santa Cruz Biotechnology (6)
CD23 клеточная поверхность [73] P06734 2208 11 BD Biosciences (6), Beckman Coulter (1), Leica Biosystems (1)
высоко аффинный IgE рецептор клеточная поверхность [73] P12319 2205 5 EMD Millipore (1), eBioscience (1), Sigma-Aldrich (1)
CD203c клеточная поверхность [73] O14638 5169
Ганглиозные клетки сетчатки
PKC альфа [75] P17252 5578 9 EMD Millipore (3), Epitomics (1), Enzo Life Sciences (1)
NGF [74] P01138 4803 1Promega (1)
Brn3b [75] Q12837 5458 1 Santa Cruz Biotechnology (1)
NSCL2 [74] P21675 6872
Hu-1 [75] P09067 3215
Пирамидальные клетки
MAP2 дендриты пирамидальных клеток [118-120] P11137 4133 36 Sigma-Aldrich (15), EMD Millipore (11), BD Biosciences (3)
SMI-32/CD3эпсилон [79-81] P07766 916 13 BD Biosciences (9), Thermo Scientific (1), Sigma-Aldrich (1)
PSD-95 дендриты пирамидальных нейронов [121] P78352 1742 10 Thermo Scientific (6), EMD Millipore (2), Santa Cruz Biotechnology (1)
CaMK2 альфа [76] Q9UQM7 815 4 EMD Millipore (1), Enzo Life Sciences (1), Santa Cruz Biotechnology (1)
mGluR1 Q13255 2911 1 EMD Millipore (1)
mGluR5 главный постсинаптический mGluR, экспрессируемый в CA1 пирамидальных нейронах [122, 123] P41594 2915 1 EMD Millipore (1)
Tbr1 маркер ранних пирамидальных нейронов [124] Q16650 10716 1 EMD Millipore (1)
RPTPгамма пирамидальные клетки и сенсорные нейроны в нервной системе [125] P23470 5793
MATH-2 маркер гиппокампальных пирамидальных клеток [82] Q96NK8 63974
SCIP маркер гиппокампальных пирамидальных клеток [82, 83] Q03052 5453
Emx1 пирамидальные нейроны [84] Q04741 2016
Zfp312 слой V и VI субкортикальных отростков пирамидальных нейронов [126] Q8TBJ5 55079
Нейрогранин/RC3 [77, 78] Q92686 4900
Половые клетки
EGFR синцитиотрофобластические клетки в тестикулярных половых опухолях [127] P00533 1956 58 Thermo Scientific (14), EMD Millipore (9), Santa Cruz Biotechnology (8)
OCT3/4 опухоли половых клеток, такие как гонадобластома и карцинома ин ситу, инвазивная эмбриональная карцинома и сперматоцитома [128] Q01860 5460 8 Santa Cruz Biotechnology (5), EMD Millipore (2), Abcam (1)
AP-2гамма гоноциты и сперматоцитомы [129, 130] Q92754 7022 1 Santa Cruz Biotechnology (1)
DAZ-like 1/DAZL1 мужские и женские гонады [88] Q92904 1618 1
MAGE-A4тестикулярные опухоли [131] P43358 4103
VASA нормальные и опухолевые половые клетки человека [89] Q9NQI0 54514 1
ZAR1 [86] Q86SH2 326340
RBM нормальные мужские половые клетки [91] P0DJD3 5940
Tesmin дифференциация мужских половых клеток [92] Q9Y4I5 9633
TEX101 мужские и женские половые клетки [90] Q9BY14 83639
GCNA1только для мыши [86, 87]
GP90-MC301 половые клетки в пренатальных и постнатальных яичках [132]
M2A CIS половые клетки [133]
шванновские клетки
глиальный фибриллярный кислый белок/GFAP немиелинизирующие шванновские клетки P14136 2670 80 Dako (35), Sigma-Aldrich (19), EMD Millipore (12)
S100A1 P23297 6271 19Dako (12), Sigma-Aldrich (2), BioLegend (1)
основной белок миелина/MBP миелинизирующие шванновские клетки P02686 4155 15 EMD Millipore (7), Dako (4), BioLegend (1)
белок миелина нольмиелинизирующие шванновские клетки P25189 4359 1Individual Researcher (1)
клетки Пуркинье
GABA-T/трансаминаза гамма-аминобутиратной кислоты маркер дифференциации клеток Пуркинье [134, 135] P80404 18 1 Sigma-Aldrich (1)
кальбиндин мозжечковые клетки Пуркинье [136] P05937 793 17 Sigma-Aldrich (9), SWant (7), EMD Millipore (1)
NMDA-NR1/NMDA-R1 взрослые мозжечковые клетки Пуркинье [137] Q05586 2902 6 EMD Millipore (4), BD Biosciences (2)
GAD67/67-kDa изоформа декарбоксилазы глутаминовой кислоты Маркер дифференциации клеток Пуркинье [135] Q99259 2571 6 EMD Millipore (2), Enzo Life Sciences (1), BD Biosciences (1)
PMCA/кальциевый канал плазматической мембраныболее дистальные дендриты клеток Пуркинье [138] P20020 490 5 Thermo Scientific (3), Alpha Diagnostics (1)
HDAC6экспрессируемый большинством нейронов, но в изобилии присутствует и в мозжечковых клетках Пуркинье [139] Q9UBN7 10013 2 Santa Cruz Biotechnology (2)
цГМФ-зависимая протеинкиназа [95] Q13976 5592 2 Santa Cruz Biotechnology (1), Enzo Life Sciences (1)
PMCA2/плазматическая мембрана Ca(2+)-транспорт АТФаза-2 [140, 141] Q01814 491 2 Thermo Scientific (2)
кластеринишемические клетки Пуркинье в мозге человека [142] P10909 1191 2 Santa Cruz Biotechnology (1), Individual Researcher (1)
PDE5 [143, 144] O76074 8654 1 Abcam (1)
Инозитол 1, 4, 5-трифосфатные рецепторы/IP3R [102-104] Q14643 3708 2 EMD Millipore (1), Individual Researcher (1)
Зебрин II/Альдолаза [97-99, 145-148] P09972 230
PDE1B [143, 144] Q01064 5153
SERCA [149] Q93084 489
кальмодулин-зависимая фосфодиэстераза/PDE1A высокие уровни в мозжечковых клетках Пуркинье [150] P14100 281969
Car8 высокие уровни в мозжечковых клетках Пуркинье [100] P35219 767
HFB-16/KIAA0864 белокКлетки Пуркинье в развивающемся мозге человека [101] Q6WCQ1 23164
OMP/обонятельный маркер белокклетки Пуркинье задней доли [151] P47874 4975
PCA-1/PCA-2цитоплазма клеток Пуркинье [152, 153, 153, 154] P22413 5167 1Individual Researcher (1)
PDE9A мозжечковые клетки Пуркинье у грызунов [155] O76083 5152
PEP-19/PEP19 мозжечковые клетки Пуркинье [156] P48539 5121
cerebellin количественный маркер созревания клеток Пуркинье [157, 158] P23435 869
Гуанозин 3':5'-фосфат-зависимая протеинкиназа [96]
MAP-120локализована в теле клеток Пуркинье [159]
PCPP-260/фосфобелок клеток Пуркинье молекулярной массой 260.000мозжечковые клетки Пуркинье [160, 161]
Пятно 35 белок/S-35мозжечковые клетки Пуркинье [162-167]
клетки гранулезы
фибронектин маркер дифференцировки гранулезных клеток [110] P02751 2335 23 BD Biosciences (5), Sigma-Aldrich (4), Dako (3)
AMH/анти-муллериановский гормон маркер клеток Сертоли и гранулезы в гонадальных опухолях [105] P03971 268 5 Santa Cruz Biotechnology (3), Beckman Coulter (1), R and D Systems (1)
MCAM/молекула адгезии клеток меланомы/CD146 [109] P43121 4162 4Enzo Life Sciences (1), EMD Millipore (1), Santa Cruz Biotechnology (1)
chZPCспецифический маркер гранулезы у цыплят [168] P21754 778
фолликул регулирующий белок/FRPсекретируется клетками гранулезы яичника, маркер рака клеток гранулезы [106]
Большие лютеиновые клетки
фосфорилированный Akt [113] P31749 207 48 Cell Signaling Technology (32), Santa Cruz Biotechnology (8), EMD Millipore (5)
рецептор лютеинизирующего гормона [112] P22888 3973 1 ATCC (1)
CYP11A1экспрессируется лютеиновыми клеткаи как стероидогенными клетками [111] P05108 1583
Клетки Сертоли
виментинзрелые клетки Сертоли [169, 170] P08670 7431 61 Dako (23), Sigma-Aldrich (13), Thermo Scientific (4)
цитокератин 18 Клетки Сертоли в дородовой и препубертатный периоды [171, 172, 172, 173] P05783 3875 19 Sigma-Aldrich (6), Thermo Scientific (4), Leica Biosystems (2)
кальретининнезрелые клетки Сертоли [172] P22676 794 10 SWant (4), Sigma-Aldrich (3), EMD Millipore (2)
SCF/фактор стволовых клетокпродуцируется клетками Сертоли [174-178] P21583 4254 5 Immuno-Biological Laboratories (1), Santa Cruz Biotechnology (1), R and D Systems (1)
MIS/муллериановская ингибирующая субстанцияфетальные клетки Сертоли [179] P03971 268 5 Santa Cruz Biotechnology (3), Beckman Coulter (1), R and D Systems (1)
Sox9регулирует дифференциацию клеток Сертоли в яичках [180-183] P48436 6662 4 Santa Cruz Biotechnology (2), R and D Systems (1), Individual Researcher (1)
ингибин B [184, 185] P09529 3625 2 AbD Serotec (Bio-Rad) (2)
ABP/андроген-связывающий белок функциональный маркер клеток Сертоли [114, 186, 187] P04278 6462 1Fitzgerald Industries (1)
кластерин крысиные клетки Сертоли [188, 189] P10909 1191 Santa Cruz Biotechnology (1), Individual Researcher (1)
GATA-1клетки Сертоли на определенных этапах семенных канальцев [116] P15976 2623 1 Santa Cruz Biotechnology (1)
GATA-4фетальные клетки Сертоли в семенных канальцах [190-194] P43694 2626 6 Santa Cruz Biotechnology (6)
Dhh/desert hedgehog [115, 195-198] O43323 50846
рецептор серотонина 1Aклетки Сертоли в нормальных яичках [199, 200] P08908 3350
M2A незрелые клетки Сертоли [201, 202]
циклический белок-2/CP-2секретируется клетками Сертоли [203-206]
Кардиомиоциты
PCM1ядро кардиомиоцитов [1] Q15154 5108
Таблица 7. Маркеры различных типов клеток и главные три поставщика антител к ним среди 10.000 публикаций, проанализированных Labome.
Ссылки
  1. Bergmann O, Zdunek S, Alkass K, Druid H, Bernard S, Frisen J. Identification of cardiomyocyte nuclei and assessment of ploidy for the analysis of cell turnover. Exp Cell Res. 2011;317:188-94 pubmed publisher
  2. Bergmann, et al. Dynamics of Cell Generation and Turnover in the Human Heart. Available from: dx.doi.org/10.1016/j.cell.2015.05.026
  3. Rosen E, Walkey C, Puigserver P, Spiegelman B. Transcriptional regulation of adipogenesis. Genes Dev. 2000;14:1293-307 pubmed
  4. Harms M, Seale P. Brown and beige fat: development, function and therapeutic potential. Nat Med. 2013;19:1252-63 pubmed publisher
  5. Walden T, Hansen I, Timmons J, Cannon B, Nedergaard J. Recruited vs. nonrecruited molecular signatures of brown, "brite," and white adipose tissues. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2012;302:E19-31 pubmed publisher
  6. Petrovic N, Walden T, Shabalina I, Timmons J, Cannon B, Nedergaard J. Chronic peroxisome proliferator-activated receptor gamma (PPARgamma) activation of epididymally derived white adipocyte cultures reveals a population of thermogenically competent, UCP1-containing adipocytes molecularly distinct from classic brown adipocyt. J Biol Chem. 2010;285:7153-64 pubmed publisher
  7. Wu J, Boström P, Sparks L, Ye L, Choi J, Giang A, et al. Beige adipocytes are a distinct type of thermogenic fat cell in mouse and human. Cell. 2012;150:366-76 pubmed publisher
  8. Sharp L, Shinoda K, Ohno H, Scheel D, Tomoda E, Ruiz L, et al. Human BAT possesses molecular signatures that resemble beige/brite cells. PLoS ONE. 2012;7:e49452 pubmed publisher
  9. Lidell M, Betz M, Dahlqvist Leinhard O, Heglind M, Elander L, Slawik M, et al. Evidence for two types of brown adipose tissue in humans. Nat Med. 2013;19:631-4 pubmed publisher
  10. Ussar S, Lee K, Dankel S, Boucher J, Haering M, Kleinridders A, et al. ASC-1, PAT2, and P2RX5 are cell surface markers for white, beige, and brown adipocytes. Sci Transl Med. 2014;6:247ra103 pubmed publisher
  11. Middleton J, Americh L, Gayon R, Julien D, Mansat M, Mansat P, et al. A comparative study of endothelial cell markers expressed in chronically inflamed human tissues: MECA-79, Duffy antigen receptor for chemokines, von Willebrand factor, CD31, CD34, CD105 and CD146. J Pathol. 2005;206:260-8 pubmed
  12. Harris E, Nelson W. VE-cadherin: at the front, center, and sides of endothelial cell organization and function. Curr Opin Cell Biol. 2010;22:651-8 pubmed publisher
  13. Constans J, Conri C. Circulating markers of endothelial function in cardiovascular disease. Clin Chim Acta. 2006;368:33-47 pubmed
  14. Keuschnigg J, Henttinen T, Auvinen K, Karikoski M, Salmi M, Jalkanen S. The prototype endothelial marker PAL-E is a leukocyte trafficking molecule. Blood. 2009;114:478-84 pubmed publisher
  15. Lehle K, Straub R, Morawietz H, Kunz-Schughart L. Relevance of disease- and organ-specific endothelial cells for in vitro research. Cell Biol Int. 2010;34:1231-8 pubmed publisher
  16. Liu Q, Hu T, He L, Huang X, Tian X, Zhang H, et al. Genetic targeting of sprouting angiogenesis using Apln-CreER. Nat Commun. 2015;6:6020 pubmed publisher
  17. Sun T, Eichner R, Nelson W, Tseng S, Weiss R, Jarvinen M, et al. Keratin classes: molecular markers for different types of epithelial differentiation. J Invest Dermatol. 1983;81:109s-15s pubmed
  18. Moll R, Divo M, Langbein L. The human keratins: biology and pathology. Histochem Cell Biol. 2008;129:705-33 pubmed publisher
  19. Strnad P, Paschke S, Jang K, Ku N. Keratins: markers and modulators of liver disease. Curr Opin Gastroenterol. 2012;28:209-16 pubmed publisher
  20. Weng Y, Cui Y, Fang J. Biological functions of cytokeratin 18 in cancer. Mol Cancer Res. 2012;10:485-93 pubmed publisher
  21. Takeuchi S, Furue M. Dendritic cells: ontogeny. Allergol Int. 2007;56:215-23 pubmed
  22. Shortman K, Liu Y. Mouse and human dendritic cell subtypes. Nat Rev Immunol. 2002;2:151-61 pubmed
  23. Amano H, Amano E, Santiago-Raber M, Moll T, Martinez-Soria E, Fossati-Jimack L, et al. Selective expansion of a monocyte subset expressing the CD11c dendritic cell marker in the Yaa model of systemic lupus erythematosus. Arthritis Rheum. 2005;52:2790-8 pubmed
  24. Colonna M, Trinchieri G, Liu Y. Plasmacytoid dendritic cells in immunity. Nat Immunol. 2004;5:1219-26 pubmed
  25. Conrad C, Gregorio J, Wang Y, Ito T, Meller S, Hanabuchi S, et al. Plasmacytoid dendritic cells promote immunosuppression in ovarian cancer via ICOS costimulation of Foxp3(+) T-regulatory cells. Cancer Res. 2012;72:5240-9 pubmed publisher
  26. Merad M, Ginhoux F, Collin M. Origin, homeostasis and function of Langerhans cells and other langerin-expressing dendritic cells. Nat Rev Immunol. 2008;8:935-47 pubmed publisher
  27. Moody D, Zajonc D, Wilson I. Anatomy of CD1-lipid antigen complexes. Nat Rev Immunol. 2005;5:387-99 pubmed
  28. Sallusto F, Lanzavecchia A. Efficient presentation of soluble antigen by cultured human dendritic cells is maintained by granulocyte/macrophage colony-stimulating factor plus interleukin 4 and downregulated by tumor necrosis factor alpha. J Exp Med. 1994;179:1109-18 pubmed
  29. Caux C, Vanbervliet B, Massacrier C, Dezutter-Dambuyant C, de Saint-Vis B, Jacquet C, et al. CD34+ hematopoietic progenitors from human cord blood differentiate along two independent dendritic cell pathways in response to GM-CSF+TNF alpha. J Exp Med. 1996;184:695-706 pubmed
  30. Zhang Y, Harada A, Wang J, Zhang Y, Hashimoto S, Naito M, et al. Bifurcated dendritic cell differentiation in vitro from murine lineage phenotype-negative c-kit+ bone marrow hematopoietic progenitor cells. Blood. 1998;92:118-28 pubmed
  31. Mahanonda R, Sa-Ard-Iam N, Yongvanitchit K, Wisetchang M, Ishikawa I, Nagasawa T, et al. Upregulation of co-stimulatory molecule expression and dendritic cell marker (CD83) on B cells in periodontal disease. J Periodontal Res. 2002;37:177-83 pubmed
  32. Troxell M, Schwartz E, van de Rijn M, Ross D, Warnke R, Higgins J, et al. Follicular dendritic cell immunohistochemical markers in angioimmunoblastic T-cell lymphoma. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2005;13:297-303 pubmed
  33. Grogg K, Lae M, Kurtin P, Macon W. Clusterin expression distinguishes follicular dendritic cell tumors from other dendritic cell neoplasms: report of a novel follicular dendritic cell marker and clinicopathologic data on 12 additional follicular dendritic cell tumors and 6 additional inter. Am J Surg Pathol. 2004;28:988-98 pubmed
  34. Ehrnsperger A, Rehli M, Thu-Hang P, Kreutz M. Epigenetic regulation of the dendritic cell-marker gene ADAM19. Biochem Biophys Res Commun. 2005;332:456-64 pubmed
  35. Bonnefont-Rebeix C, de Carvalho C, Bernaud J, Chabanne L, Marchal T, Rigal D. CD86 molecule is a specific marker for canine monocyte-derived dendritic cells. Vet Immunol Immunopathol. 2006;109:167-76 pubmed
  36. Salaun B, de Saint-Vis B, Clair-Moninot V, Pin J, Barthelemy-Dubois C, Kissenpfennig A, et al. Cloning and characterization of the mouse homologue of the human dendritic cell maturation marker CD208/DC-LAMP. Eur J Immunol. 2003;33:2619-29 pubmed
  37. Meyerholz D, DeGraaff J, Gallup J, Olivier A, Ackermann M. Depletion of alveolar glycogen corresponds with immunohistochemical development of CD208 antigen expression in perinatal lamb lung. J Histochem Cytochem. 2006;54:1247-53 pubmed
  38. Schlapbach C, Ochsenbein A, Kaelin U, Hassan A, Hunger R, Yawalkar N. High numbers of DC-SIGN+ dendritic cells in lesional skin of cutaneous T-cell lymphoma. J Am Acad Dermatol. 2010;62:995-1004 pubmed publisher
  39. Kronin V, Wu L, Gong S, Nussenzweig M, Shortman K. DEC-205 as a marker of dendritic cells with regulatory effects on CD8 T cell responses. Int Immunol. 2000;12:731-5 pubmed
  40. Sahin U, Neumann F, Tureci O, Schmits R, Perez F, Pfreundschuh M. Hodgkin and Reed-Sternberg cell-associated autoantigen CLIP-170/restin is a marker for dendritic cells and is involved in the trafficking of macropinosomes to the cytoskeleton, supporting a function-based concept of Hodgkin and Reed-Sternberg cells. Blood. 2002;100:4139-45 pubmed
  41. Breel M, Laman J, Kraal G. Murine hybrid cell lines expressing the NLDC-145 dendritic cell determinant. Immunobiology. 1988;178:167-76 pubmed
  42. Fritsche J, Moser M, Faust S, Peuker A, Buttner R, Andreesen R, et al. Molecular cloning and characterization of a human metalloprotease disintegrin--a novel marker for dendritic cell differentiation. Blood. 2000;96:732-9 pubmed
  43. Chen L, Yang P, Kijlstra A. Distribution, markers, and functions of retinal microglia. Ocul Immunol Inflamm. 2002;10:27-39 pubmed
  44. Grinspan J. Cells and signaling in oligodendrocyte development. J Neuropathol Exp Neurol. 2002;61:297-306 pubmed
  45. Perez-Martin M, Cifuentes M, Grondona J, Bermudez-Silva F, Arrabal P, Pérez-Fígares J, et al. Neurogenesis in explants from the walls of the lateral ventricle of adult bovine brain: role of endogenous IGF-1 as a survival factor. Eur J Neurosci. 2003;17:205-11 pubmed
  46. van Velzen M, Laman J, Kleinjan A, Poot A, Osterhaus A, Verjans G. Neuron-interacting satellite glial cells in human trigeminal ganglia have an APC phenotype. J Immunol. 2009;183:2456-61 pubmed publisher
  47. Calloni R, Cordero E, Henriques J, Bonatto D. Reviewing and updating the major molecular markers for stem cells. Stem Cells Dev. 2013;22:1455-76 pubmed publisher
  48. Metcalf D, Begley C, Nicola N, Johnson G. Quantitative responsiveness of murine hemopoietic populations in vitro and in vivo to recombinant multi-CSF (IL-3). Exp Hematol. 1987;15:288-95 pubmed
  49. Metcalf D, Burgess A, Johnson G, Nicola N, Nice E, Delamarter J, et al. In vitro actions on hemopoietic cells of recombinant murine GM-CSF purified after production in Escherichia coli: comparison with purified native GM-CSF. J Cell Physiol. 1986;128:421-31 pubmed
  50. Yamaguchi Y, Suda T, Suda J, Eguchi M, Miura Y, Harada N, et al. Purified interleukin 5 supports the terminal differentiation and proliferation of murine eosinophilic precursors. J Exp Med. 1988;167:43-56 pubmed
  51. Schroeder J. Basophils beyond effector cells of allergic inflammation. Adv Immunol. 2009;101:123-61 pubmed publisher
  52. Granot Z, Henke E, Comen E, King T, Norton L, Benezra R. Tumor entrained neutrophils inhibit seeding in the premetastatic lung. Cancer Cell. 2011;20:300-14 pubmed publisher
  53. Escribano L, Orfao A, Villarrubia J, Diaz-Agustin B, Cerveró C, Rios A, et al. Immunophenotypic characterization of human bone marrow mast cells. A flow cytometric study of normal and pathological bone marrow samples. Anal Cell Pathol. 1998;16:151-9 pubmed
  54. Freud A, Caligiuri M. Human natural killer cell development. Immunol Rev. 2006;214:56-72 pubmed
  55. Sekita T, Tamaru J, Isobe K, Harigaya K, Masuoka S, Katayama T, et al. Diffuse large B cell lymphoma expressing the natural killer cell marker CD56. Pathol Int. 1999;49:752-8 pubmed
  56. Chan J, Sin V, Wong K, Ng C, Tsang W, Chan C, et al. Nonnasal lymphoma expressing the natural killer cell marker CD56: a clinicopathologic study of 49 cases of an uncommon aggressive neoplasm. Blood. 1997;89:4501-13 pubmed
  57. Bernardini G, Gismondi A, Santoni A. Chemokines and NK cells: regulators of development, trafficking and functions. Immunol Lett. 2012;145:39-46 pubmed publisher
  58. Coulam C, Roussev R. Correlation of NK cell activation and inhibition markers with NK cytoxicity among women experiencing immunologic implantation failure after in vitro fertilization and embryo transfer. J Assist Reprod Genet. 2003;20:58-62 pubmed
  59. Inngjerdingen M, Kveberg L, Naper C, Vaage J. Natural killer cell subsets in man and rodents. Tissue Antigens. 2011;78:81-8 pubmed publisher
  60. Mavilio D, Benjamin J, Kim D, Lombardo G, Daucher M, Kinter A, et al. Identification of NKG2A and NKp80 as specific natural killer cell markers in rhesus and pigtailed monkeys. Blood. 2005;106:1718-25 pubmed
  61. Alter G, Malenfant J, Altfeld M. CD107a as a functional marker for the identification of natural killer cell activity. J Immunol Methods. 2004;294:15-22 pubmed
  62. Rodríguez-Caulo E, Velazquez C, Barquero J, Garcia-Borbolla M. Atypical chest pain and hemoptysis 27 years after aortic coarctation surgery: aortobronchial fistula, management and endovascular treatment. Rev Esp Cardiol. 2011;64:726-7 pubmed publisher
  63. Habu S, Hayakawa K, Okumura K, Tada T. Surface markers on natural killer cells of the mouse. Eur J Immunol. 1979;9:938-42 pubmed
  64. Brinkmann V, Kristofic C. Massive production of Th2 cytokines by human CD4+ effector T cells transiently expressing the natural killer cell marker CD57/HNK1. Immunology. 1997;91:541-7 pubmed
  65. Ritson A, Bulmer J. Endometrial granulocytes in human decidua react with a natural-killer (NK) cell marker, NKH1. Immunology. 1987;62:329-31 pubmed
  66. Biuling F, Tonevitskii A, Kiuster U, Anzorge S. [Study of dipeptidyl peptidase IV as a surface marker of human natural killer cells]. Biull Eksp Biol Med. 1990;110:411-3 pubmed
  67. Körfer A, Kirchner H, Schneekloth C, Buhrer C, Wisniewski D, Gulati S, et al. Immunophenotypic demonstration of two natural killer surface markers, H25 and H366, on fresh human leukemic cells. Acta Haematol. 1989;82:193-6 pubmed
  68. Romagnani S. Th1/Th2 cells. Inflamm Bowel Dis. 1999;5:285-94 pubmed
  69. Jung S, Littman D. Chemokine receptors in lymphoid organ homeostasis. Curr Opin Immunol. 1999;11:319-25 pubmed
  70. Bonecchi R, Bianchi G, Bordignon P, D'Ambrosio D, Lang R, Borsatti A, et al. Differential expression of chemokine receptors and chemotactic responsiveness of type 1 T helper cells (Th1s) and Th2s. J Exp Med. 1998;187:129-34 pubmed
  71. Sallusto F, Lenig D, Mackay C, Lanzavecchia A. Flexible programs of chemokine receptor expression on human polarized T helper 1 and 2 lymphocytes. J Exp Med. 1998;187:875-83 pubmed
  72. Schneider U, Schwenk H, Bornkamm G. Characterization of EBV-genome negative "null" and "T" cell lines derived from children with acute lymphoblastic leukemia and leukemic transformed non-Hodgkin lymphoma. Int J Cancer. 1977;19:621-6 pubmed
  73. Heneberg P. Mast cells and basophils: trojan horses of conventional lin- stem/progenitor cell isolates. Curr Pharm Des. 2011;17:3753-71 pubmed
  74. González-Hoyuela M, Barbas J, Rodriguez-Tebar A. The autoregulation of retinal ganglion cell number. Development. 2001;128:117-24 pubmed
  75. Aoki H, Hara A, Niwa M, Motohashi T, Suzuki T, Kunisada T. An in vitro mouse model for retinal ganglion cell replacement therapy using eye-like structures differentiated from ES cells. Exp Eye Res. 2007;84:868-75 pubmed
  76. Muller J, Mascagni F, McDonald A. Pyramidal cells of the rat basolateral amygdala: synaptology and innervation by parvalbumin-immunoreactive interneurons. J Comp Neurol. 2006;494:635-50 pubmed
  77. Filippov A, Choi R, Simon J, Barnard E, Brown D. Activation of P2Y1 nucleotide receptors induces inhibition of the M-type K+ current in rat hippocampal pyramidal neurons. J Neurosci. 2006;26:9340-8 pubmed
  78. Higo N, Oishi T, Yamashita A, Matsuda K, Hayashi M. Cell type- and region-specific expression of neurogranin mRNA in the cerebral cortex of the macaque monkey. Cereb Cortex. 2004;14:1134-43 pubmed
  79. Lalonde J, Lachance P, Chaudhuri A. Monocular enucleation induces nuclear localization of calcium/calmodulin-dependent protein kinase IV in cortical interneurons of adult monkey area V1. J Neurosci. 2004;24:554-64 pubmed
  80. Wannier T, Schmidlin E, Bloch J, Rouiller E. A unilateral section of the corticospinal tract at cervical level in primate does not lead to measurable cell loss in motor cortex. J Neurotrauma. 2005;22:703-17 pubmed
  81. del Rio M, Defelipe J. A study of SMI 32-stained pyramidal cells, parvalbumin-immunoreactive chandelier cells, and presumptive thalamocortical axons in the human temporal neocortex. J Comp Neurol. 1994;342:389-408 pubmed
  82. Castro P, Pleasure S, Baraban S. Hippocampal heterotopia with molecular and electrophysiological properties of neocortical neurons. Neuroscience. 2002;114:961-72 pubmed
  83. Frantz G, Bohner A, Akers R, McConnell S. Regulation of the POU domain gene SCIP during cerebral cortical development. J Neurosci. 1994;14:472-85 pubmed
  84. Hammond V, Howell B, Godinho L, Tan S. disabled-1 functions cell autonomously during radial migration and cortical layering of pyramidal neurons. J Neurosci. 2001;21:8798-808 pubmed
  85. Yoshinaga K, Muramatsu H, Muramatsu T. Immunohistochemical localization of the carbohydrate antigen 4C9 in the mouse embryo: a reliable marker of mouse primordial germ cells. Differentiation. 1991;48:75-82 pubmed
  86. Pennetier S, Uzbekova S, Perreau C, Papillier P, Mermillod P, Dalbies-Tran R. Spatio-temporal expression of the germ cell marker genes MATER, ZAR1, GDF9, BMP15,andVASA in adult bovine tissues, oocytes, and preimplantation embryos. Biol Reprod. 2004;71:1359-66 pubmed
  87. Maatouk D, Kellam L, Mann M, Lei H, Li E, Bartolomei M, et al. DNA methylation is a primary mechanism for silencing postmigratory primordial germ cell genes in both germ cell and somatic cell lineages. Development. 2006;133:3411-8 pubmed
  88. Lifschitz-Mercer B, Elliott D, Issakov J, Leider-Trejo L, Schreiber L, Misonzhnik F, et al. Localization of a specific germ cell marker, DAZL1, in testicular germ cell neoplasias. Virchows Arch. 2002;440:387-91 pubmed
  89. Zeeman A, Stoop H, Boter M, Gillis A, Castrillon D, Oosterhuis J, et al. VASA is a specific marker for both normal and malignant human germ cells. Lab Invest. 2002;82:159-66 pubmed
  90. Tsukamoto H, Yoshitake H, Mori M, Yanagida M, Takamori K, Ogawa H, et al. Testicular proteins associated with the germ cell-marker, TEX101: involvement of cellubrevin in TEX101-trafficking to the cell surface during spermatogenesis. Biochem Biophys Res Commun. 2006;345:229-38 pubmed
  91. Lifschitz-Mercer B, Elliott D, Leider-Trejo L, Schreiber-Bramante L, Hassner A, Eisenthal A, et al. Absence of RBM expression as a marker of intratubular (in situ) germ cell neoplasia of the testis. Hum Pathol. 2000;31:1116-20 pubmed
  92. Sugihara T, Wadhwa R, Kaul S, Mitsui Y. A novel testis-specific metallothionein-like protein, tesmin, is an early marker of male germ cell differentiation. Genomics. 1999;57:130-6 pubmed
  93. Gonzalez-Martinez T, Perez-Pinera P, Diaz-Esnal B, Vega J. S-100 proteins in the human peripheral nervous system. Microsc Res Tech. 2003;60:633-8 pubmed
  94. Harauz G, Ishiyama N, Hill C, Bates I, Libich D, Fares C. Myelin basic protein-diverse conformational states of an intrinsically unstructured protein and its roles in myelin assembly and multiple sclerosis. Micron. 2004;35:503-42 pubmed
  95. Feil R, Hartmann J, Luo C, Wolfsgruber W, Schilling K, Feil S, et al. Impairment of LTD and cerebellar learning by Purkinje cell-specific ablation of cGMP-dependent protein kinase I. J Cell Biol. 2003;163:295-302 pubmed
  96. De Camilli P, Miller P, Levitt P, Walter U, Greengard P. Anatomy of cerebellar Purkinje cells in the rat determined by a specific immunohistochemical marker. Neuroscience. 1984;11:761-817 pubmed
  97. Hallem J, Thompson J, Gundappa-Sulur G, Hawkes R, Bjaalie J, Bower J. Spatial correspondence between tactile projection patterns and the distribution of the antigenic Purkinje cell markers anti-zebrin I and anti-zebrin II in the cerebellar folium crus IIA of the rat. Neuroscience. 1999;93:1083-94 pubmed
  98. Pakan J, Iwaniuk A, Wylie D, Hawkes R, Marzban H. Purkinje cell compartmentation as revealed by zebrin II expression in the cerebellar cortex of pigeons (Columba livia). J Comp Neurol. 2007;501:619-30 pubmed
  99. Lannoo M, Hawkes R. A search for primitive Purkinje cells: zebrin II expression in sea lampreys (Petromyzon marinus). Neurosci Lett. 1997;237:53-5 pubmed
  100. Yan J, Jiao Y, Jiao F, Stuart J, Donahue L, Beamer W, et al. Effects of carbonic anhydrase VIII deficiency on cerebellar gene expression profiles in the wdl mouse. Neurosci Lett. 2007;413:196-201 pubmed
  101. Nakamura Y, Yamamoto M, Oda E, Kanemura Y, Kodama E, Yamamoto A, et al. A novel marker for Purkinje cells, KIAA0864 protein. An analysis based on a monoclonal antibody HFB-16 in developing human cerebellum. J Histochem Cytochem. 2005;53:423-30 pubmed
  102. Morita T, Nakamura K, Sawada M, Shimada A, Sato K, Miyata H, et al. Inositol 1,4,5-triphosphate receptor protein immunohistochemistry of cerebellar Purkinje cells in two dogs with hypoglycemia. Vet Pathol. 2004;41:82-6 pubmed
  103. Maeda N, Kawasaki T, Nakade S, Yokota N, Taguchi T, Kasai M, et al. Structural and functional characterization of inositol 1,4,5-trisphosphate receptor channel from mouse cerebellum. J Biol Chem. 1991;266:1109-16 pubmed
  104. Miyata M, Miyata H, Mikoshiba K, Ohama E. Development of Purkinje cells in humans: an immunohistochemical study using a monoclonal antibody against the inositol 1,4,5-triphosphate type 1 receptor (IP3R1). Acta Neuropathol. 1999;98:226-32 pubmed
  105. Rey R, Sabourin J, Venara M, Long W, Jaubert F, Zeller W, et al. Anti-Müllerian hormone is a specific marker of sertoli- and granulosa-cell origin in gonadal tumors. Hum Pathol. 2000;31:1202-8 pubmed
  106. Rodgers K, Marks J, Ellefson D, Yanagihara D, Tonetta S, Vasilev S, et al. Follicle regulatory protein: a novel marker for granulosa cell cancer patients. Gynecol Oncol. 1990;37:381-7 pubmed
  107. Pautier P, Bidart J, Lallou N, Duvillard P, Michel G, Droz J, et al. [Value of inhibin as a tumor marker in granulosa cell tumors. Apropos of 6 new cases treated at the Gustave-Roussy Institute]. Bull Cancer. 1995;82:557-60 pubmed
  108. Lappöhn R, Burger H, Bouma J, Bangah M, Krans M, de Bruijn H. Inhibin as a marker for granulosa-cell tumors. N Engl J Med. 1989;321:790-3 pubmed
  109. Yoshioka S, Fujiwara H, Higuchi T, Yamada S, Maeda M, Fujii S. Melanoma cell adhesion molecule (MCAM/CD146) is expressed on human luteinizing granulosa cells: enhancement of its expression by hCG, interleukin-1 and tumour necrosis factor-alpha. Mol Hum Reprod. 2003;9:311-9 pubmed
  110. Skinner M, McKeracher H, Dorrington J. Fibronectin as a marker of granulosa cell cytodifferentiation. Endocrinology. 1985;117:886-92 pubmed
  111. Quirk S, Cowan R, Harman R. Role of the cell cycle in regression of the corpus luteum. Reproduction. 2013;145:161-75 pubmed publisher
  112. Dickinson R, Stewart A, Myers M, Millar R, Duncan W. Differential expression and functional characterization of luteinizing hormone receptor splice variants in human luteal cells: implications for luteolysis. Endocrinology. 2009;150:2873-81 pubmed publisher
  113. Goto M, Iwase A, Ando H, Kurotsuchi S, Harata T, Kikkawa F. PTEN and Akt expression during growth of human ovarian follicles. J Assist Reprod Genet. 2007;24:541-6 pubmed
  114. Hagenäs L, Ritzen E, Ploöen L, Hansson V, French F, Nayfeh S. Sertoli cell origin of testicular androgen-binding protein (ABP). Mol Cell Endocrinol. 1975;2:339-50 pubmed
  115. Tevosian S, Albrecht K, Crispino J, Fujiwara Y, Eicher E, Orkin S. Gonadal differentiation, sex determination and normal Sry expression in mice require direct interaction between transcription partners GATA4 and FOG2. Development. 2002;129:4627-34 pubmed
  116. Lavoie H. The role of GATA in mammalian reproduction. Exp Biol Med (Maywood). 2003;228:1282-90 pubmed
  117. Wan Y. Multi-tasking of helper T cells. Immunology. 2010;130:166-71 pubmed publisher
  118. Hayashi N, Oohira A, Miyata S. Synaptic localization of receptor-type protein tyrosine phosphatase zeta/beta in the cerebral and hippocampal neurons of adult rats. Brain Res. 2005;1050:163-9 pubmed
  119. Shimada A, Tsuzuki M, Keino H, Satoh M, Chiba Y, Saitoh Y, et al. Apical vulnerability to dendritic retraction in prefrontal neurones of ageing SAMP10 mouse: a model of cerebral degeneration. Neuropathol Appl Neurobiol. 2006;32:1-14 pubmed
  120. Curtetti R, Garbossa D, Vercelli A. Development of dendritic bundles of pyramidal neurons in the rat visual cortex. Mech Ageing Dev. 2002;123:473-9 pubmed
  121. Kawachi H, Tamura H, Watakabe I, Shintani T, Maeda N, Noda M. Protein tyrosine phosphatase zeta/RPTPbeta interacts with PSD-95/SAP90 family. Brain Res Mol Brain Res. 1999;72:47-54 pubmed
  122. Yeh T, Wang H. Global ischemia downregulates the function of metabotropic glutamate receptor subtype 5 in hippocampal CA1 pyramidal neurons. Mol Cell Neurosci. 2005;29:484-92 pubmed
  123. Mannaioni G, Marino M, Valenti O, Traynelis S, Conn P. Metabotropic glutamate receptors 1 and 5 differentially regulate CA1 pyramidal cell function. J Neurosci. 2001;21:5925-34 pubmed
  124. Englund C, Fink A, Lau C, Pham D, Daza R, Bulfone A, et al. Pax6, Tbr2, and Tbr1 are expressed sequentially by radial glia, intermediate progenitor cells, and postmitotic neurons in developing neocortex. J Neurosci. 2005;25:247-51 pubmed
  125. Lamprianou S, Vacaresse N, Suzuki Y, Meziane H, Buxbaum J, Schlessinger J, et al. Receptor protein tyrosine phosphatase gamma is a marker for pyramidal cells and sensory neurons in the nervous system and is not necessary for normal development. Mol Cell Biol. 2006;26:5106-19 pubmed
  126. Chen J, Rasin M, Kwan K, Sestan N. Zfp312 is required for subcortical axonal projections and dendritic morphology of deep-layer pyramidal neurons of the cerebral cortex. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005;102:17792-7 pubmed
  127. Hechelhammer L, Störkel S, Odermatt B, Heitz P, Jochum W. Epidermal growth factor receptor is a marker for syncytiotrophoblastic cells in testicular germ cell tumors. Virchows Arch. 2003;443:28-31 pubmed
  128. de Jong J, Looijenga L. Stem cell marker OCT3/4 in tumor biology and germ cell tumor diagnostics: history and future. Crit Rev Oncog. 2006;12:171-203 pubmed
  129. Pauls K, Jäger R, Weber S, Wardelmann E, Koch A, Buttner R, et al. Transcription factor AP-2gamma, a novel marker of gonocytes and seminomatous germ cell tumors. Int J Cancer. 2005;115:470-7 pubmed
  130. Hoei-Hansen C, Nielsen J, Almstrup K, Sonne S, Graem N, Skakkebaek N, et al. Transcription factor AP-2gamma is a developmentally regulated marker of testicular carcinoma in situ and germ cell tumors. Clin Cancer Res. 2004;10:8521-30 pubmed
  131. Aubry F, Satie A, Rioux-Leclercq N, Rajpert-De Meyts E, Spagnoli G, Chomez P, et al. MAGE-A4, a germ cell specific marker, is expressed differentially in testicular tumors. Cancer. 2001;92:2778-85 pubmed
  132. Tanii I, Yoshinaga K. Change in expression of a 90-kDa glycoprotein GP90-MC301 during prenatal and postnatal testicular development: a differentiation marker for rat germ cells. Histochem Cell Biol. 2002;118:409-14 pubmed
  133. Giwercman A, Marks A, Bailey D, Baumal R, Skakkebaek N. A monoclonal antibody as a marker for carcinoma in situ germ cells of the human adult testis. APMIS. 1988;96:667-70 pubmed
  134. Martyniuk C, Awad R, Hurley R, Finger T, Trudeau V. Glutamic acid decarboxylase 65, 67, and GABA-transaminase mRNA expression and total enzyme activity in the goldfish (Carassius auratus) brain. Brain Res. 2007;1147:154-66 pubmed
  135. Zanjani H, Lemaigre-Dubreuil Y, Tillakaratne N, Blokhin A, McMahon R, Tobin A, et al. Cerebellar Purkinje cell loss in aging Hu-Bcl-2 transgenic mice. J Comp Neurol. 2004;475:481-92 pubmed
  136. Vigot R, Kado R, Batini C. Increased calbindin-D28K immunoreactivity in rat cerebellar Purkinje cell with excitatory amino acids agonists is not dependent on protein synthesis. Arch Ital Biol. 2004;142:69-75 pubmed
  137. Kakegawa W, Tsuzuki K, Iino M, Ozawa S. Functional NMDA receptor channels generated by NMDAR2B gene transfer in rat cerebellar Purkinje cells. Eur J Neurosci. 2003;17:887-91 pubmed
  138. Tolosa de Talamoni N, Smith C, Wasserman R, Beltramino C, Fullmer C, Penniston J. Immunocytochemical localization of the plasma membrane calcium pump, calbindin-D28k, and parvalbumin in Purkinje cells of avian and mammalian cerebellum. Proc Natl Acad Sci U S A. 1993;90:11949-53 pubmed
  139. Southwood C, Peppi M, Dryden S, Tainsky M, Gow A. Microtubule deacetylases, SirT2 and HDAC6, in the nervous system. Neurochem Res. 2007;32:187-95 pubmed
  140. Kurnellas M, Lee A, Li H, Deng L, Ehrlich D, Elkabes S. Molecular alterations in the cerebellum of the plasma membrane calcium ATPase 2 (PMCA2)-null mouse indicate abnormalities in Purkinje neurons. Mol Cell Neurosci. 2007;34:178-88 pubmed
  141. Sepulveda M, Hidalgo-Sanchez M, Marcos D, Mata A. Developmental distribution of plasma membrane Ca2+-ATPase isoforms in chick cerebellum. Dev Dyn. 2007;236:1227-36 pubmed
  142. Yasuhara O, Aimi Y, Yamada T, Matsuo A, McGeer E, McGeer P. Clusterin as a marker for ischaemic Purkinje cells in human brain. Neurodegeneration. 1994;3:325-9 pubmed
  143. Shimizu-Albergine M, Rybalkin S, Rybalkina I, Feil R, Wolfsgruber W, Hofmann F, et al. Individual cerebellar Purkinje cells express different cGMP phosphodiesterases (PDEs): in vivo phosphorylation of cGMP-specific PDE (PDE5) as an indicator of cGMP-dependent protein kinase (PKG) activation. J Neurosci. 2003;23:6452-9 pubmed
  144. Bender A, Beavo J. Specific localized expression of cGMP PDEs in Purkinje neurons and macrophages. Neurochem Int. 2004;45:853-7 pubmed
  145. Ginzburg L, Futerman A. Defective calcium homeostasis in the cerebellum in a mouse model of Niemann-Pick A disease. J Neurochem. 2005;95:1619-28 pubmed
  146. Royds J, Ironside J, Warnaar S, Taylor C, Timperley W. Monoclonal antibody to aldolase C: a selective marker for Purkinje cells in the human cerebellum. Neuropathol Appl Neurobiol. 1987;13:11-21 pubmed
  147. Caffe A, von Schantz M, Szel A, Voogd J, van Veen T. Distribution of Purkinje cell-specific Zebrin-II/aldolase C immunoreactivity in the mouse, rat, rabbit, and human retina. J Comp Neurol. 1994;348:291-7 pubmed
  148. Buono P, Barbieri O, Alfieri A, Rosica A, Astigiano S, Cantatore D, et al. Diverse human aldolase C gene promoter regions are required to direct specific LacZ expression in the hippocampus and Purkinje cells of transgenic mice. FEBS Lett. 2004;578:337-44 pubmed
  149. Sepulveda M, Hidalgo-Sanchez M, Mata A. A developmental profile of the levels of calcium pumps in chick cerebellum. J Neurochem. 2005;95:673-83 pubmed
  150. Balaban C, Billingsley M, Kincaid R. Evidence for transsynaptic regulation of calmodulin-dependent cyclic nucleotide phosphodiesterase in cerebellar Purkinje cells. J Neurosci. 1989;9:2374-81 pubmed
  151. Nunzi M, Grillo M, Margolis F, Mugnaini E. Compartmental organization of Purkinje cells in the mature and developing mouse cerebellum as revealed by an olfactory marker protein-lacZ transgene. J Comp Neurol. 1999;404:97-113 pubmed
  152. Pittock S, Kryzer T, Lennon V. Paraneoplastic antibodies coexist and predict cancer, not neurological syndrome. Ann Neurol. 2004;56:715-9 pubmed
  153. Vernino S, Lennon V. New Purkinje cell antibody (PCA-2): marker of lung cancer-related neurological autoimmunity. Ann Neurol. 2000;47:297-305 pubmed
  154. Lee H, Lennon V, Camilleri M, Prather C. Paraneoplastic gastrointestinal motor dysfunction: clinical and laboratory characteristics. Am J Gastroenterol. 2001;96:373-9 pubmed
  155. van Staveren W, Glick J, Markerink-van Ittersum M, Shimizu M, Beavo J, Steinbusch H, et al. Cloning and localization of the cGMP-specific phosphodiesterase type 9 in the rat brain. J Neurocytol. 2002;31:729-41 pubmed
  156. Mugnaini E, Berrebi A, Dahl A, Morgan J. The polypeptide PEP-19 is a marker for Purkinje neurons in cerebellar cortex and cartwheel neurons in the dorsal cochlear nucleus. Arch Ital Biol. 1987;126:41-67 pubmed
  157. Slemmon J, Danho W, Hempstead J, Morgan J. Cerebellin: a quantifiable marker for Purkinje cell maturation. Proc Natl Acad Sci U S A. 1985;82:7145-8 pubmed
  158. Slemmon J, Goldowitz D, Blacher R, Morgan J. Evidence for the transneuronal regulation of cerebellin biosynthesis in developing Purkinje cells. J Neurosci. 1988;8:4603-11 pubmed
  159. Huber G, Schuler A. Characterization of a new 120 kDa microtubule-associated protein (MAP) of rat brain. Neurosci Lett. 1991;128:221-5 pubmed
  160. Walaas S, Nairn A, Greengard P. PCPP-260, a Purkinje cell-specific cyclic AMP-regulated membrane phosphoprotein of Mr 260,000. J Neurosci. 1986;6:954-61 pubmed
  161. O'Callaghan J, Miller D. Cerebellar hypoplasia in the Gunn rat is associated with quantitative changes in neurotypic and gliotypic proteins. J Pharmacol Exp Ther. 1985;234:522-33 pubmed
  162. Kondo H, Yamamoto M, Yamakuni T, Takahashi Y. An immunohistochemical study of the ontogeny of the horizontal cell in the rat retina using an antiserum against spot 35 protein, a novel Purkinje cell-specific protein, as a marker. Anat Rec. 1988;222:103-9 pubmed
  163. Takahashi-Iwanaga H. Reticular endings of Purkinje cell axons in the rat cerebellar nuclei: scanning electron microscopic observation of the pericellular plexus of Cajal. Arch Histol Cytol. 1992;55:307-14 pubmed
  164. Yamagishi M, Nakamura H, Nakano Y, Kuwano R. Immunohistochemical study of the fourth cell type in the olfactory epithelium in guinea pigs and in a patient. ORL J Otorhinolaryngol Relat Spec. 1992;54:85-90 pubmed
  165. Yoshie S, Wakasugi C, Teraki Y, Iwanaga T, Fujita T. Fine structure of the taste bud in guinea pigs. II. Localization of spot 35 protein, a cerebellar Purkinje cell-specific protein, as revealed by electron-microscopic immunocytochemistry. Arch Histol Cytol. 1991;54:113-8 pubmed
  166. Kondo H, Yamamoto M, Yamakuni T, Takahashi Y. Heterogeneity of the ciliary epithelium of the rat eye as revealed by spot 35 protein (a Purkinje cell specific protein)-like immunoreactivity. Histochemistry. 1988;89:53-6 pubmed
  167. Takahashi-Iwanaga H, Kondo H, Yamakuni T, Takahashi Y. An immunohistochemical study on the ontogeny of cells immunoreactive for spot 35 protein, a novel Purkinje cell-specific protein, in the rat cerebellum. Brain Res. 1986;394:225-31 pubmed
  168. Waclawek M, Foisner R, Nimpf J, Schneider W. The chicken homologue of zona pellucida protein-3 is synthesized by granulosa cells. Biol Reprod. 1998;59:1230-9 pubmed
  169. Rogatsch H, Jezek D, Hittmair A, Mikuz G, Feichtinger H. Expression of vimentin, cytokeratin, and desmin in Sertoli cells of human fetal, cryptorchid, and tumour-adjacent testicular tissue. Virchows Arch. 1996;427:497-502 pubmed
  170. Steger K, Rey R, Kliesch S, Louis F, Schleicher G, Bergmann M. Immunohistochemical detection of immature Sertoli cell markers in testicular tissue of infertile adult men: a preliminary study. Int J Androl. 1996;19:122-8 pubmed
  171. Franke F, Pauls K, Rey R, Marks A, Bergmann M, Steger K. Differentiation markers of Sertoli cells and germ cells in fetal and early postnatal human testis. Anat Embryol (Berl). 2004;209:169-77 pubmed
  172. Bar-Shira Maymon B, Yavetz H, Yogev L, Kleiman S, Lifschitz-Mercer B, Schreiber L, et al. Detection of calretinin expression in abnormal immature Sertoli cells in non-obstructive azoospermia. Acta Histochem. 2005;107:105-12 pubmed
  173. Bar-Shira Maymon B, Paz G, Elliott D, Hammel I, Kleiman S, Yogev L, et al. Maturation phenotype of Sertoli cells in testicular biopsies of azoospermic men. Hum Reprod. 2000;15:1537-42 pubmed
  174. Chowdhury M, Steinberger A, Steinberger E. Inhibition of de novo synthesis of FSH by the Sertoli cell factor (SCF). Endocrinology. 1978;103:644-7 pubmed
  175. Hofmann M, Van Der Wee K, Dargart J, Dirami G, Dettin L, Dym M. Establishment and characterization of neonatal mouse sertoli cell lines. J Androl. 2003;24:120-30 pubmed
  176. Fox R, Sigman M, Boekelheide K. Transmembrane versus soluble stem cell factor expression in human testis. J Androl. 2000;21:579-85 pubmed
  177. Hakovirta H, Yan W, Kaleva M, Zhang F, Vänttinen K, Morris P, et al. Function of stem cell factor as a survival factor of spermatogonia and localization of messenger ribonucleic acid in the rat seminiferous epithelium. Endocrinology. 1999;140:1492-8 pubmed
  178. Mauduit C, Chatelain G, Magre S, Brun G, Benahmed M, Michel D. Regulation by pH of the alternative splicing of the stem cell factor pre-mRNA in the testis. J Biol Chem. 1999;274:770-5 pubmed
  179. Tremblay J, Viger R. Nuclear receptor Dax-1 represses the transcriptional cooperation between GATA-4 and SF-1 in Sertoli cells. Biol Reprod. 2001;64:1191-9 pubmed
  180. Zhao C, Bratthauer G, Barner R, Vang R. Immunohistochemical analysis of sox9 in ovarian Sertoli cell tumors and other tumors in the differential diagnosis. Int J Gynecol Pathol. 2007;26:1-9 pubmed
  181. Kato N, Fukase M, Motoyama T. Expression of a transcription factor, SOX9, in Sertoli-stromal cell tumors of the ovary. Int J Gynecol Pathol. 2004;23:180-1 pubmed
  182. Hemendinger R, Gores P, Blacksten L, Harley V, Halberstadt C. Identification of a specific Sertoli cell marker, Sox9, for use in transplantation. Cell Transplant. 2002;11:499-505 pubmed
  183. Fröjdman K, Harley V, Pelliniemi L. Sox9 protein in rat sertoli cells is age and stage dependent. Histochem Cell Biol. 2000;113:31-6 pubmed
  184. Winters S, Wang C, Abdelrahaman E, Hadeed V, Dyky M, Brufsky A. Inhibin-B levels in healthy young adult men and prepubertal boys: is obesity the cause for the contemporary decline in sperm count because of fewer Sertoli cells?. J Androl. 2006;27:560-4 pubmed
  185. Bordallo M, Guimarães M, Pessoa C, Carrico M, Dimetz T, Gazolla H, et al. Decreased serum inhibin B/FSH ratio as a marker of Sertoli cell function in male survivors after chemotherapy in childhood and adolescence. J Pediatr Endocrinol Metab. 2004;17:879-87 pubmed
  186. Sanborn B, Elkington J, Steinberger A, Steinberger E. Androgen binding in the testis: in vitro production of androgen binding protein (ABP) by Sertoli cell cultures and measurement of nuclear bound androgen by a nuclear exchange assay. Curr Top Mol Endocrinol. 1975;2:293-309 pubmed
  187. Hansson V, Weddington S, Naess O, Attramadal A, French F, Kotite N, et al. Testicular androgen binding protein (ABP) - a parameter of Sertoli cell secretory function. Curr Top Mol Endocrinol. 1975;2:323-36 pubmed
  188. Clark A, Griswold M. Expression of clusterin/sulfated glycoprotein-2 under conditions of heat stress in rat Sertoli cells and a mouse Sertoli cell line. J Androl. 1997;18:257-63 pubmed
  189. Cheng C, Chen C, Feng Z, Marshall A, Bardin C. Rat clusterin isolated from primary Sertoli cell-enriched culture medium is sulfated glycoprotein-2 (SGP-2). Biochem Biophys Res Commun. 1988;155:398-404 pubmed
  190. Yagi M, Takenaka M, Suzuki K, Suzuki H. Reduced mitotic activity and increased apoptosis of fetal sertoli cells in rat hypogonadic (hgn/hgn) testes. J Reprod Dev. 2007;53:581-9 pubmed
  191. Jimenez-Severiano H, Mussard M, Fitzpatrick L, D'Occhio M, Ford J, Lunstra D, et al. Testicular development of Zebu bulls after chronic treatment with a gonadotropin-releasing hormone agonist. J Anim Sci. 2005;83:2111-22 pubmed
  192. Bielinska M, Seehra A, Toppari J, Heikinheimo M, Wilson D. GATA-4 is required for sex steroidogenic cell development in the fetal mouse. Dev Dyn. 2007;236:203-13 pubmed
  193. Imai T, Kawai Y, Tadokoro Y, Yamamoto M, Nishimune Y, Yomogida K. In vivo and in vitro constant expression of GATA-4 in mouse postnatal Sertoli cells. Mol Cell Endocrinol. 2004;214:107-15 pubmed
  194. McCoard S, Lunstra D, Wise T, Ford J. Specific staining of Sertoli cell nuclei and evaluation of Sertoli cell number and proliferative activity in Meishan and White Composite boars during the neonatal period. Biol Reprod. 2001;64:689-95 pubmed
  195. Pierucci-Alves F, Clark A, Russell L. A developmental study of the Desert hedgehog-null mouse testis. Biol Reprod. 2001;65:1392-402 pubmed
  196. Kroft T, Patterson J, Won Yoon J, Doglio L, Walterhouse D, Iannaccone P, et al. GLI1 localization in the germinal epithelial cells alternates between cytoplasm and nucleus: upregulation in transgenic mice blocks spermatogenesis in pachytene. Biol Reprod. 2001;65:1663-71 pubmed
  197. Clark A, Garland K, Russell L. Desert hedgehog (Dhh) gene is required in the mouse testis for formation of adult-type Leydig cells and normal development of peritubular cells and seminiferous tubules. Biol Reprod. 2000;63:1825-38 pubmed
  198. Bitgood M, Shen L, McMahon A. Sertoli cell signaling by Desert hedgehog regulates the male germline. Curr Biol. 1996;6:298-304 pubmed
  199. Syed V, Hecht N. Selective loss of Sertoli cell and germ cell function leads to a disruption in sertoli cell-germ cell communication during aging in the Brown Norway rat. Biol Reprod. 2001;64:107-12 pubmed
  200. Syed V, Gomez E, Hecht N. Messenger ribonucleic acids encoding a serotonin receptor and a novel gene are induced in Sertoli cells by a secreted factor(s) from male rat meiotic germ cells. Endocrinology. 1999;140:5754-60 pubmed
  201. Blagosklonova O, Joanne C, Roux C, Bittard H, Fellmann F, Bresson J. Absence of anti-Müllerian hormone (AMH) and M2A immunoreactivities in Sertoli cell-only syndrome and maturation arrest with and without AZF microdeletions. Hum Reprod. 2002;17:2062-5 pubmed
  202. Baumal R, Bailey D, Giwercman A, Skakkebaek N, Stratis M, Marks A. A novel maturation marker for human Sertoli cells. Int J Androl. 1989;12:354-9 pubmed
  203. Erickson-Lawrence M, Zabludoff S, Wright W. Cyclic protein-2, a secretory product of rat Sertoli cells, is the proenzyme form of cathepsin L. Mol Endocrinol. 1991;5:1789-98 pubmed
  204. Zabludoff S, Karzai A, Wright W. Germ cell-Sertoli cell interactions: the effect of testicular maturation on the synthesis of cyclic protein-2 by rat Sertoli cells. Biol Reprod. 1990;43:25-33 pubmed
  205. Wright W, Zabludoff S, Erickson-Lawrence M, Karzai A. Germ cell-Sertoli cell interactions. Studies of cyclic protein-2 in the seminiferous tubule. Ann N Y Acad Sci. 1989;564:173-85 pubmed
  206. Wright W, Luzarraga M. Isolation of cyclic protein-2 from rat seminiferous tubule fluid and Sertoli cell culture medium. Biol Reprod. 1986;35:761-72 pubmed
  207. Geisbert T, Young H, Jahrling P, Davis K, Larsen T, Kagan E, et al. Pathogenesis of Ebola hemorrhagic fever in primate models: evidence that hemorrhage is not a direct effect of virus-induced cytolysis of endothelial cells. Am J Pathol. 2003;163:2371-82 pubmed
  208. Teunissen M, Zheng L, de Groot M, de Rie M, Fine J, Chen S. Rise in dermal CD11c+ dendritic cells associates with early-stage development of psoriatic lesions. Arch Dermatol Res. 2012;304:443-9 pubmed publisher
  209. Bremer J, O'Connor T, Tiberi C, Rehrauer H, Weis J, Aguzzi A. Ablation of Dicer from murine Schwann cells increases their proliferation while blocking myelination. PLoS ONE. 2010;5:e12450 pubmed publisher
  210. Ma R, Xu J, Dong B, Kauther M, Jager M, Wedemeyer C. Inhibition of osteoclastogenesis by RNA interference targeting RANK. BMC Musculoskelet Disord. 2012;13:154 pubmed publisher
  211. Moyer K, Kaimal V, Pacheco C, Mourya R, Xu H, Shivakumar P, et al. Staging of biliary atresia at diagnosis by molecular profiling of the liver. Genome Med. 2010;2:33 pubmed
  212. Milner J, Paul W. Limited T-cell receptor diversity predisposes to Th2 immunopathology: involvement of Tregs and conventional CD4 T cells. J Clin Immunol. 2008;28:631-4 pubmed publisher
ISSN : 2329-5139